Comparative characteristics of different endotypes in chronic rhinosinusitis
- Authors: Lazareva A.M.1, Smirnova O.V.1
-
Affiliations:
- Research Institute of Medical Problems of the North, Krasnoyarsk Science Center, Siberian Branch, Russian Academy of Sciences
- Issue: Vol 29, No 1 (2026)
- Pages: 35-42
- Section: REVIEWS
- Submitted: 28.06.2024
- Accepted: 24.07.2025
- Published: 18.01.2026
- URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/17004
- DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-17004-CCO
- ID: 17004
Cite item
Full Text
Abstract
Chronic rhinosinusitis (CRS) is the most common reason for consulting at the otolaryngologist. Although data on the prevalence of rhinosinusitis are inconsistent, the average global prevalence was 11.61±5.47%, ranging from 1.01% to a maximum of 57.6%. As based on the consensus document EPOS 2020 (European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyposis), CRS is classified into polypous and polyp-free rhinosinusitis. Polypous rhinosinusitis is a special type characterized by inferior response to conservative therapy, and frequent relapses after surgical treatment. These serious medical and social issues are promoting the studies on pathogenesis and development of nasal polyps. This review provides information about immunological features and dysfunction leading to emergence of CRS with or without polyps. The purpose of this literature review is to evaluate the role of the first-line immune defense, congenital and acquired components of immunity in pathogenesis of polyposis versus nonpolypous CRS. The article provides a review of the research articles published worldwide. The authors conducted a search on the significance of immune response in development of CRS with and without polyps. We used appropriate keywords and filters in the PubMed and Google Scholar databases, in Scopus, Web of Science, MedLine, Cochrane Library, EMBASE, Global Health, and CyberLeninka databases. The detailed search has shown that all components of immune system do not fully perform their functions. E.g., the respiratory epithelium and mucociliary clearance present the first-line immune defense of nasal and sinus mucosa which form a mechanical barrier to infectious and other invading agents. At the next stage, the cells of innate immune response, along with complement system, take part in elimination of external pathogenic agents. Presentation of antigen epitopes to lymphocytes generates a specialized adaptive immune response. Tissue remodeling is among the most relevant aspects of the CRS pathogenesis. Production of periostin is found to be increased in polyposis rhinosinusitis, along with progressive tissue eosinophilia, higher production of cystatin SN, IL-25 and fibroblast contents, decreased TLR2, TLR4, TGF-β and collagen production as well as increased extracellular neutrophil traps and M1 macrophage levels. Further studies on the links in immune pathogenesis of CRS could allow us to develop a personalized algorithm for the diagnosis and treatment of such patients.
Full Text
Введение
Сравнительная характеристика различных эндотипов хронических риносинуситов
Хронический риносинусит (ХРС) – это воспаление слизистой оболочки носа и придаточных пазух длительностью не менее 12 недель, характеризующееся двумя и более из таких симптомов, как ощущение заложенности в носу, выделения слизистого характера из полости носа, наличие слизи на задней стенке глотки, болевые ощущения, сдавления или распирания в области лица и костей черепа.
ХРС представляет собой гетерогенную группу заболеваний носовых пазух со сложным и не до конца изученным патогенезом, зависящим от фенотипа заболевания. К важнейшим этиологическим факторам относятся: бактериальные, грибковые и вирусные инфекции, аллергены, коморбидные заболевания, генетические полиморфизмы, иммунодефицитные состояния.
Традиционно выделяют следующие фенотипы ХРС: риносинусит с полипами в носу и околоносовых придаточных пазухах (ПРС) и ХРС без появления полипозной ткани. Второй вид ХРС является фенотипически гетерогенным и включает в себя инфекционный, гиперпластический, атрофический, вазомоторный и атопический риносинуситы. Иммунопатогенез этих разновидностей заболевания будет различаться. Это обусловлено различными механизмами развития заболевания и этиологическими факторами [7]. Преимущественно, по данным литературы, при ХРС развивается Th2-вариант иммунного ответа [2].
Первой линией защиты слизистой полости носа и пазух является респираторный эпителий и мукоцилиарный клиренс, которые образуют механический барьер к инфекционным и другим проникающим агентам. Иммунные реакции реализуются на слизистой оболочке полости носа и пазух. Течение хронического воспалительного процесса при ХРС вызывает нарушение работы клеток респираторного эпителия с усилением проницаемости защитного барьера [3]. Далее в нейтрализации патогенов участвует система врожденного иммунитета и система комплимента. Презентация эпитопа антигена лимфоцитам формирует специализированный адаптивный иммунный ответ [9].
Цель данного обзора – изучить по данным литературы влияние первой линии защиты, компонентов врожденного и приобретенного иммунитета на патогенез полипозного и неполипозного ХРС.
В статье представлен обзор зарубежной научной литературы. Авторами был проведен научный поиск по тематике иммунного ответа при формировании риносинуситов с полипами и без них. Использовали соответствующие ключевые слова и фильтры в поисковых системах PubMed и Google Scholar, по базам данных Scopus, Web of Science. Ключевые слова: хронический риносинусит, эндотип, эпителиальная дисфункция, эозинофилы, носовые полипы, нейтрофилы.
Эпителий дыхательных путей как первая линия защиты пазух носа
Мукоцилиарный клиренс является основным врожденным защитным механизмом, поддерживающим транспорт и удаление веществ со слизистой.
Слизь вырабатывается бокаловидными клетками и содержит муцины с антибактериальными свойствами. Нарушение функций ресничек респираторного эпителия при ХРС затрудняет транспортировку и выведение веществ со слизистой. Снижение дифференцировки реснитчатых клеток и частоты движений опосредовано дисбалансом содержания IFNγ и IL-13, а также увеличивается при гиперплазии бокаловидных клеток [5]. Первичная цилиарная дискинезия также может быть причиной нарушения мукоцилиарного клиренса [20]. Кроме того, эозинофильный эндотип ПРС характеризуется повышением уровня двух основных муцинов дыхательных путей (ДП): MUC5AC и MUC5B [5, 6].
Повышенная экспрессия муцина MUC5AC и метаплазия бокаловидных клеток также наблюдались в синоназальной ткани человека при ХРС при пассивном и активном курении [8]. В мукозальном отделяемом с поверхности полипозной ткани в высоких концентрациях обнаруживаются такие пептиды, как серпины, периостин, цистататин-2, паппализин и другие. Синтез периостина связан с утолщением базальной мембраны и тканевой эозинофилией [9] и, возможно, участвует в ремоделировании слизистой при появлении носовых полипов [1].
Белок цистатин SN инициирует функционирование эпителиального барьера и осуществление иммунного ответа. Его содержание повышено у пациентов с эозинофильным типом ПРС, но снижено у пациентов с неэозинофильным типом ПРС относительно контроля [18].
Высокое содержание цистатина SN в назальном отделяемом имеет положительную корреляцию с быстрым ростом и рецидивированием полипоза при ПРС [28]. Пептид паппализин-А индуцирует пролиферацию клеток. Периостин стимулирует ангиогенез, пролиферацию, увеличение числа эозинофилов, иммунному ответу Th2-типа и ремоделированию ДП. Семейство серпинов, в частности serpinF2 и serpinE1, вызывают активацию фибринолиза [27]. Анализ образцов слизистой пазух пациентов с ХРС продемонстрировал снижение иммунного ответа врожденного звена иммунитета слизистой оболочки и повышение клеточного метаболизма, усиливающее ремоделирование тканей [4]. Воспалительные белки назальной слизи также могут быть причиной нарушения обоняния, и их профиль различен при сравнении пациентов с ПРС и ХРС без назальных полипов (НП) [8, 9].
Плотные соединения между близко расположенными клетками респираторного эпителия образуют селективно проницаемые барьеры. В ходе развития ХРС снижаются уровни содержания молекул, образующих плотные соединения: JAM-A, E-кадгерин [13], zonula occludens 1 (ZO-1), окклюдин-1 [14], а также снижается уровень IFNγ и IL-4, которые, скорее всего, играют важную роль в этом процессе [24]. Целостность барьера и дисфункция ресничек также опосредованы снижением уровня р63 [16], что может приводить к образованию НП путем перепрограммирования морфологии эпителия, особенно ресничек и адгезивных соединений [16, 26].
Секреторные функции эпителия ДП
Еще одной функцией ДП является секреция защитных молекул, действующих против патогенных микроорганизмов. Секретом ДП является лактоферрин, лизоцим, перекись водорода и оксид азота (NO). В результате синтеза полипозной ткани усиливается продукция двойных оксидаз 1 и 2 (DUOX1 и DUOX2) и перекиси водорода [2, 27]. На воздействие антигенов эпителий выделяет цитокины, при ХРС важное значение имеют IL-25, IL-33, TSLP (тимический стромальный лимфопоэтин). Помимо респираторного эпителия эти биологические модуляторы межклеточных взаимодействий синтезируются иммунной системой макроорганизма.
IL-33 синтезируется макрофагами и дендритными клетками (ДК), IL-25 – эозинофилами или тучными клетками [18, 25]. IL-25 напрямую сотрудничает с фибробластами носовой полости, которые могут участвовать в развитии полипоза носа [13, 17]. Исследования показали, что повышенные концентрации TSLP и IL-33 усиливают синтез факторов иммунного ответа Th2-типа [2, 20]. IL-33 возможно стимулируют репарацию слизистой оболочки носа и придаточных пазух, активируя сигнальный путь Notch-1 [3].
ТSLP и IL-33 стимулируют синтез ILC2 с выделением IL-5, активирующего эозинофилы вместе с IL-13 [13]. ДК (особенно в эозинофильном варианте ПРС) выделяют периостин [21], который усиливает секрецию TSLP респираторным эпителием, активирующий тучные клетки для продуцирования IL-5 [9]. Это может приводить к Th2-ответу и эозинофилии при ПРС.
Роль хемосенсорных клеток в иммунопатогенезе ХРС
Солитарные хемосенсорные клетки находятся в респираторном эпителии [24] и часто встречаются в тканях носовых полипов при гистологическом исследовании. Они синтезируют IL-25, активирующий ILC2, чем и опосредуют реализацию иммунного пути по Th2-типу [3, 10].
Поверхность солитарных хемосенсорных клеток богата вкусовыми рецепторами (T2R), имеющими иммунорегуляторные функции. Стимуляция T2R приводит к выработке антимикробных пептидов и NO, а также к повышению частоты движения ресничных мышц. При этом функции T2R в эпителии верхних ДП генетически обусловлены [25]. В случае РС нечувствительный генотип рецептора горького вкуса T2R38 связан с повышенной колонизацией грамотрицательных бактерий и более тяжелым течением заболевания [9]. Интересно, что у человека T2R38 обнаружен на оболочке иммуннокомпетентных клеток (CD4 и CD8), наличие T2R38 характерно среди пациентов более молодого возраста относительно старшего контингента [4].
Еще одна важная функция T2R – это выработка оксида азота на слизистой оболочке носа и придаточных пазухах, обеспечивающая функции нейтрализации чужеродных веществ. [6]. Было показано наличие T2R на поверхности альвеолярных макрофагов, стимуляция агонистами их рецепторов снижала синтез цитокинов [11]. Функции Toll-подобных рецепторов в развитии ХРС TLR (Toll-подобные рецепторы) встречаются как на поверхности клетки, так и в эндосомах, эндоплазматическом ретикулуме, лизосомах. Их задача – распознавать молекулярные паттерны, ассоциированные с патогенами (PAMP).
Основываясь на локализации клеток, Toll-подобные рецепторы идентифицируют мембраны чужеродных клеток или их нуклеиновые кислоты [24]. При распознавании чужеродного агента происходит выработка и выделение цитокинов, хемокинов и других протективных молекул и клеток иммунитета. Таким образом, функции TLR – это инициация и поддержание воспалительных реакций. Они могут увеличивать биосинтез интерферона I типа после вирусной атаки [12]. В случае ХРС без полипозной ткани, содержание TLR2, TLR4, TGF-β и коллагена увеличиваются относительно ХРС с полипами в носу, а выработка TLR2 и TLR4 коррелирует с количеством нейтрофилов на слизистой оболочке носа и придаточных пазухах при РС [15].
При ПРС нарушения в синтезе TLR2 приводят к дисбалансу регуляторных клеток Th17/T (Treg). Показано, что препарат из Aspergillus flavus может ускорять Тh17-опосредованное воспаление, а повышение экспрессии TLR2 и ядерного фактора κB (NF-κB) на слизистой оболочке носа при ХРС связано с появлением биопленок [20].
Гипоксия эпителия ДП при развитии ХРС
Дефицит кислорода нарушает иммунные функции при ПРС, вызывая повышение концентрации IL-17A, гипоксически-индуцируемого фактора 1α (HIF-1α) и HIF-2α [1]. Содержание фактора HIF-1α в назальном отделяемом при ПРС значимо выше относительно группы здоровых, а уровень HIF-1α в полипозной ткани имеет положительную корреляцию с продукцией IL-17A и нейтрофильным воспалением [22]. Экспериментальные модели in vitro клеток эпителия носа, культивируемых в гипоксических условиях, показали интенсификацию секреции хемокинов и хемотаксиса эозинофилов и нейтрофилов по сравнению с условиями с адекватным уровнем кислорода [8] и повышение содержания эотаксина-1 (CCL11), эотаксина-2 (CCL24) и эотаксина-3 (CCL26) в тканях полипов носа [9]. Показано, что гипоксические состояния, которые могут происходить на слизистой оболочке во время хронического синусита, приводят к повышенной выработке HIF-1α и MUC5AC [19].
Роль клеток врожденного иммунного ответа при ХРС
Основными активаторами врожденных лимфоидных клеток являются эпителиальные цитокины IL-25, IL-33 и TSLP. Активированные врожденные лимфоидные клетки продуцируют провоспалительные цитокины IFNγ, IL-5, IL-13, IL-22 и IL-17А [28] и модулируют функциональные ответы других популяций иммунных клеток. ILC1, ILC2 и ILC3 взаимодействуют с CD4+Т-лимфоцитами субпопуляций Th1, Th2 и Th17 [2].
Каждый тип врожденных лимфоидных клеток продуцирует соответствующие цитокины, обладающие плейотропностью [28].
ILC1 регулирует ответ на внедрение РНК-вирусов, внутриклеточные бактерии и обеспечивает Th1-тип иммунного ответа с выработкой соответствующих цитокинов, в основном IFNγ.
ILC2 участвуют в иммунном ответе на аллергию, паразитов и запуск репарации тканей, способствуют ответу 2-го типа и увеличению концентраций цитокинов Th2-типа: IL-4, IL-5, IL-13.
ILC3 осуществляют инактивацию внеклеточных организмов посредством Th17-типа иммунного ответа, выделяя для этого IL-17 и IL-22 [11, 27]. Вероятно, основную роль в возникновении ПРС играют ILC2. Однако клетки ILC1 и ILC3 тоже определяются при ХРС, но их точный функциональный вклад до конца не изучен.
Нейтрофильные лейкоциты в патогенезе ХРС
Клетки-нейтрофилы становятся активными в ответ на присутствие микробов, грибков, при нарушении целостности тканей они способствуют фагоцитозу, в том числе внеклеточных микробов. Точная роль нейтрофилов при ХРС остается неясной, однако в азиатской популяции они ассоциированы с развитием ПРС в значительно большей степени по сравнению с европеоидами [26]. Нейтрофилы способствуют повреждению тканей путем дегрануляции [6, 11]; с другой стороны, они могут секретировать онкостатин-М, который запускает репарацию эпителия [28] и препятствует профибротическому эффекту интерлейкинов IL-4 и TGF-β1 [3]. Микроокружение полипозной ткани приводит к дифференцировке IL-17-позитивных Т-лимфоцитов, их количество положительно коррелирует с инфильтрацией синоназальной ткани нейтрофилами. Локальное инфицирование бактерией Staphylococcus aureus (SA) может вызывать сдвиг регуляции IL-17 и IL- 17-положительных Т-клеток в тканях НП [24]. Количество внеклеточных ловушек нейтрофилов в назальном секрете, которые участвуют во врожденном иммунитете, захватывая микроорганизмы, увеличивается при обострении ХРС по сравнению со стабильным течением ХРС [5]. Количество внеклеточных нейтрофильных ловушек достоверно повышено в тканях НП, что еще раз подтверждает их серьезное значение в патогенезе у пациентов с ПРС [6].
Вклад моноцитов и макрофагов в патогенез ХРС
Моноциты и макрофаги осуществляют уничтожение чужеродных микроорганизмов из крови и тканей. В очаге воспаления моноциты трансформируются в макрофаги. Макрофаги могут быть двух фенотипов: М1 (активируются цитокинами Тh1 при начале воспалительного процесса) и макрофаги М2, стимулируемые цитокинами Th2-типа. Определено, что макрофаги М2 в тканях НП также могут участвовать в отложении фибрина.
Макрофаги рекрутируют нейтрофилы и эозинофилы в очаг воспаления [7, 12]. В тканях НП макрофаги М1 являются основным клеточным источником IL-17A, их влияние на образование НП было продемонстрировано на мышиной модели [7].
Роль базофилов в формировании ХРС
Базофилы в основном циркулируют в крови; высвобождение ими IL-4 вызывает Th2-опосредованную воспалительную реакцию [4]. Высокие концентрации IL-4 были выявлены в ткани НП пациентов при астматической триаде (это сочетание аллергической бронхиальной астмы, ПРС, непереносимость НПВС и ненаркотических анальгетиков) относительно группы с изолированной формой ПРС [22]. Возможно, повышенный уровень IL-4 можно расценивать как прогностический признак появления астматической триады.
Функции тучных клеток при ХРС
Синтез тучных клеток идет в соединительной ткани, недалеко от железистой ткани. Активация этого процесса происходит при стимуляции Toll-подобных рецепторов компонентами микробной клетки или антителами. В результате стимуляции происходит дегрануляции и выброс биологически активных веществ, приводящая к повышенной сосудистой проницаемости, нейтрализации и патогенов и аллергическим проявлениям и к отеку тканей, деградации внеклеточного матрикса и нарушению целостности эпителиального барьера [7, 9, 14]. При ХРС тучные клетки способствуют эозинофильному воспалению и запускают появление полипозной ткани и аспириновую триаду, стимулируя выброс лейкотриенов (cysLTs) или простагландинов (PGD2) [5, 8]. Тучные клетки выделяют периостин, который является важным индикатором эозинофильного воспаления [3].
Эозинофилы
Эозинофильное воспаление чаще характерно для ПРС [1]. Однако присутствие эозинофилов оказывает негативное влияние на течение заболевания, независимо от наличия НП [8]. Особенно у пациентов с рецидивирующим ПРС больше эозинофилов, а также эозинофильных агрегатов муцина [4]. Определено, что повышенный уровень эозинофилов является потенциальным диагностическим критерием для оценки тяжести заболевания [8]. При ХРС происходит повышенный синтез и ингибирование апоптоза эозинофилов, на которые влияют эпителиальные цитокины, Th2-цитокины, протеазы, компоненты системы комплемента, факторы стволовых клеток и эйкозаноиды. Наибольшую роль играют ILC и Th2-клетки [3, 8, 9].
Высокий уровень IgE коррелирует с инфильтрацией эозинофилов и, возможно, приводит к развитию НП [11], а также эозинофилы продуцируют семафорин 7А – фактор, вызывающий фибринолиз в ДП [10].
У пациентов с ХРС без полипов с общей концентрацией IgE в сыворотке крови более 100 МЕ/ мл было показано, что интраназальные глюкокортикоиды не корректируют симптоматику и необходимо применение системной гормональной линии препаратов [2].
Значение естественных клеток-киллеров при ХРС
Естественные клетки-киллеры (NK) – это лимфоциты, распознающие и обезвреживающие инфицированные клетки. Клетки-киллеры могут выделять IFNγ для активации тканевых макрофагов [5]. Для NK-клеток пациентов с ПРС характерен низкий потенциал свойств дегрануляции и низкие концентрации IFNγ или TNFα [9].
Клетки адаптивного иммунного ответа при ХРС
ДК представляют антигены наивным Т-клеткам и таким образом соединяют врожденный и адаптивный иммунные ответы.
Эпителиальные цитокины и ILC активируют ДК, что приводит к соответствующей дифференцировки Т-клеток [1, 21]. ДК могут проникать в ткань НП и активировать Т-клетки [9]. Также было отмечено увеличение концентрации фактора запрограммированной клеточной гибели при ПРС [5], а также его лиганда при эозинофильном эндотипе в азиатской популяции [9]. При эозинофильном типе ПРС ДК приводят к активации пути смешанного пути иммунного ответа (Th1/ Th2/Th17), тогда как при неэозинофильном типе ПРС ДК вызывают ответ Th1/Th17 [9].
Значение Т-клеток при ХРС
Т-клетки обеспечивают рекрутирование эффекторных клеток, нейтрализацию инфицированных клеток, взаимодействие с В-клетками, приводящее к выработке иммуноглобулинов, за выработку клеток памяти после иммунного ответа. Основными подтипами Т-клеток являются CD4+Т-хелперы и CD8+ цитотоксические Т-клетки. CD4+Т-клетки дифференцируются в пять основных субпопуляций: Th1, Th2, Th17, фолликулярные Т-хелперы и Tregs [5]. Клетки Th1 активируются фагоцитированными микробными частицами при поддержке ILC1. Th1-клетки высвобождают IFNγ, TNFα и TNFβ, осуществляющие процесс фагоцитоза микроорганизмов, активируя макрофаги и презентацию антигена, формируя клон эффекторных Т-лимфоцитов.
Th2 в основном активируются паразитами, которые мобилизуют эозинофилы, тучные клетки, ILC2 и усиливают синтез иммуноглобулинов В-лимфоцитами (чаще IgE) [9, 13]. Th2-клетки высвобождают IL-4, IL-5 и IL-13, активирующие эозинофилы, макрофаги, которые продуцируют факторы роста клеток, приводящие к репарации тканей [10]. Субпопуляция Th17 активирует нейтрофилы, моноциты и секретирует семейство IL- 17 и IL-22 [1].
Уровни собственных подтипов Т-клеток при ХРС различаются в зависимости от фенотипа риносинусита. Повышенные уровни субпопуляции Th2 с эозинофилами наблюдаются у пациентов с ПРС в Европе, а повышенные уровни Th1/ Th17-типа иммунного ответа и высокие содержания нейтрофилов характерны для азиатов [13]. Иммунологический каскад реакций одинаков как в ткани полипа, так и рядом находящихся слизистых для каждого изученного пациента с ПРС [16].
Исследования обнаружили, что если полипозную синоназальную ткань обработать SA-энтеротоксином B, то можно наблюдать Th2/ Th17-тип иммунного ответа относительно контроля. При гистологическом исследовании в тканях НП и неполиповидной ткани экспрессия генов IL-5, IL-8 и TLR4 повышена, а FoxP3, IL-1B и IL-6 снижена относительно группы здоровых лиц.
Было определено, что назначение препарата SA-энтеротоксина пациентам с ПРС запускает синтез генов IL-5 и IL-17A в полипозной ткани, увеличению содержания TLR4, а уровень гена IL-1B становится ниже. Провоспалительное микроокружение и снижение выработки противовоспалительных цитокинов могут влиять на образование НП [16]. CD8+Т-клетки могут трансформироваться в цитотоксические Т-клетки, [5]. Показано, что при ПРС обнаружены более высокие уровни CD8+, чем CD4+Т-клеток [10]. Однако их содержание одинаково высоко, несмотря на эозинофильный тип воспаления [18]. При ХРС Th1- и Th17-пути иммунного ответа активированы и связаны с экспрессией TGF-β, IFNγ и IL-6, IL-8 и IL-17 [11]. CD4+Tregs, характеризующиеся экспрессией FoxP3, обладают иммуносупрессивными функциями. Они участвуют в распознавании аутоантигенов и общем гомеостазе [1]. При ХРС снижение уровня Tregs может привести к хроническому воспалительному состоянию [12], и в целом их уровни снижены в периферической крови пациентов с ХРС без НП. Количество Tregs одинаково у пациентов с различным эндотипом РС (с полипами и без), но уровни инфильтрации тканей Tregs выше при ПРС по сравнению с ХРС. При ХРС для Tregs характерно повышение экспрессии провоспалительных факторов относительно регуляторных [22]. Также миграционный потенциал Tregs значительно снижен относительно пациентов с ХРС [4].
Роль В-лимфоцитов при ХРС
Активированные B-клетки синтезируют иммуноглобулины, связывающие антигены, и выполняют важную функцию нейтрализации различных патогенных факторов. Содержание В-клеток выше при ПРС по сравнению с пациентами с ХРС без полипозной ткани [15]. Они имеют ускоренный фенотип памяти и являются менее зрелыми или выполняют неполноценную регуляторную функцию для Th-лимфоцитов [22]. При ХРС усиливается концентрация нескольких факторов, которые потенциально могут модулировать пути ответа В-клеток. Хемокины CXCL13 и CXCL12 регулируются при ХРС и приводят к рекрутированию В-клеток [17]. IL-21, который сверхэкспрессируется в носовых полипах, активирует дифференцировку В-клеток и приводит к секреции IgG и IgA [8]. При ПРС ILC2 запускает локальную активацию В-клеток [18]. В ткани НП идет тесное взаимодействие В-клеток с тучными клетками, что усиливает локальную продукцию IgE [12, 28]. Кроме того, у пациентов с наличием полипозной ткани стимуляция TLR9 запускает релиз IFN I типа, что ведет к активации В-клеток. Высокая концентрация В-клеток в сыворотке крови положительно коррелирует с абсолютным и относительным количеством эозинофилов крови, тканевых эозинофилов и концентрацией общего IgE в сыворотке крови [19]. Таким образом, уровни В-клеточного активирующего фактора достоверно выше у пациентов с рецидивирующими полипами, что может свидетельствовать о его роли в формировании НП при ПРС и прогнозировании послеоперационного рецидива [4].
Заключение
ПРС и ХРС без полипов сопровождаются нарушениями всех звеньев иммунного ответа. Ведущими отличительными факторами в патогенезе ПРС являются повышенный синтез периостина, цистатина SN, IL-25, количество фибробластов, тканевая эозинофилия, высокое число внеклеточных нейтрофильных ловушек и уровень М1-макрофагов, снижение содержания TLR2, TLR4, TGF-β и выработки коллагена. Данные критерии могут использоваться для персонифицированного алгоритма диагностики и лечения таких больных.
About the authors
Anna M. Lazareva
Research Institute of Medical Problems of the North, Krasnoyarsk Science Center, Siberian Branch, Russian Academy of Sciences
Author for correspondence.
Email: a.m.lazareva88@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7972-3719
PhD (Medicine), Junior Researcher
Russian Federation, KrasnoyarskOlga V. Smirnova
Research Institute of Medical Problems of the North, Krasnoyarsk Science Center, Siberian Branch, Russian Academy of Sciences
Email: ovsmirnova71@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3992-9207
PhD, MD (Medicine), Professor, Head, Laboratory of Molecular Cellular Pathophysiology
Russian Federation, KrasnoyarskReferences
- Bae C.H., Na H.G., Choi Y.S., Song S.Y., Kim Y.D. Clusterin Induces MUC5AC Expression via Activation of NF-kappaB in Human Airway Epithelial Cells. Clin. Exp. Otorhinolaryngol., 2018, Vol. 11, no. 2, pp. 124-132.
- Boita M., Bucca C., Riva G., Heffler E., Rolla G. Release of type 2 cytokines by epithelial cells of nasal polyps. J. Immunol. Res., 2016, Vol. 2016, 2643297. doi: 10.1155/2016/2643297.
- Boscke R., Vladar E.K., Konnecke M., Husing B., Linke R., Pries R., Reiling N., Axelrod J.D., Nayak J.V., Wollenberg B. Wnt Signaling in Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps. Am. J. Respir Cell. Mol. Biol., 2017, Vol. 56, no. 5, pp. 575-584.
- Cho D.Y., Nayak J.V., Bravo D.T., Le W., Nguyen A., Edward J.A., Hwang P.H., Illek B., Fischer H. Expression of dual oxidases and secreted cytokines in chronic rhinosinusitis. Int. Forum Allergy Rhinol., 2013, Vol. 3, no. 5, pp. 376-383.
- Du K., Wang M., Zhang N., Yu P., Wang P., Li Y, Wang X., Zhang L., Bachert C. Involvement of the extracellular matrix proteins periostin and tenascin C in nasal polyp remodeling by regulating the expression of MMPs. Clin. Transl. Allergy., 2021, Vol. 11, no. 7, e12059. doi: 10.1002/clt2.12059.
- Ebenezer J.A., Christensen J.M., Oliver B.G., Oliver R.A., Tjin G., Ho J., Habib A.R., Rimmer J., Sacks R., Harvey R.J. Periostin as a marker of mucosal remodelling in chronic rhinosinusitis. Rhinology, 2017, Vol. 55, no. 3, pp. 234-241.
- Fokkens W.J., Lund V.J., Hopkins C., Hellings P.W., Kern R., Reitsma S., Toppila-Salmi S., Bernal-Sprekelsen M., Mullol J., Alobid I., Anselmo-Lima W.T., Bachert C., Baroody F., von Buchwald C., Cervin A., Cohen N., Constantinidis J., De Gabory L., Desrosiers M., Diamant Z., Douglas R.G., Gevaert P.H., Hafner A., Harvey R.J., Joos G.F., Kalogjera L., Knill A., Kocks J.H., Landis B.N., Limpens J., Lebeer S., Lourenco O., Meco C., Matricardi P.M., O'Mahony L., Philpott C.M., Ryan D., Schlosser R., Senior B., Smith T.L., Teeling T., Tomazic P.V., Wang D.Y., Wang D., Zhang L., Agius A.M., Ahlstrom-Emanuelsson C., Alabri R., Albu S., Alhabash S., Aleksic A., Aloulah M., Al-Qudah M., Alsaleh S., Baban M.A., Baudoin T., Balvers T., Battaglia P., Bedoya J.D., Beule A., Bofares K.M., Braverman I., Brozek-Madry E., Richard B., Callejas C., Carrie S., Caulley L., Chussi D., de Corso E., Coste A., El Hadi U., Elfarouk A., Eloy P.H., Farrokhi S., Felisati G., Ferrari M.D., Fishchuk R., Grayson W., Goncalves P.M., Grdinic B., Grgic V., Hamizan A.W., Heinichen J.V., Husain S., Ping T.I., Ivaska J., Jakimovska F., Jovancevic L., Kakande E., Kamel R., Karpischenko S., Kariyawasam H.H., Kawauchi H., Kjeldsen A., Klimek L., Krzeski A., Kopacheva Barsova G., Kim S.W., Lal D., Letort J.J., Lopatin A., Mahdjoubi A., Mesbahi A., Netkovski J., Tshipukane D.N., Obando-Valverde A., Okano M., Onerci M., Ong Y.K., Orlandi R., Otori N., Ouennoughy K., Ozkan M., Peric A., Plzak J., Prokopakis E., Prepageran N., Psaltis A., Pugin B., Raftopulos M., Rombaux P., Riechelmann H., Sahtout S., Sarafoleanu C. C., Searyoh K., Rhee C.-S., Shi J., Shkoukani M., Shukuryan A.K., Sicak M., Smyth D., Sindvongs K., Kosak T.S., Stjarne P., Sutikno B., Steinsvag S., Tantilipikorn P., Thanaviratananich S., Tran T., Urbancic J., Valiulius A., de Aparicio C.V., Vicheva D., Virkkula P.M., Vicente G., Voegels R., Wagenmann M.M., Wardani R.S., Welge-Lussen A., Witterick I., Wright E., Zabolotniy D., Zsolt B., Zwetsloot C.P. European position paper on rhinosinusitis and nasal polyps. Rhinology, 2020, Vol. 58, no. S9, pp. 1-464.
- Ito T., Ikeda S., Asamori T., Honda K., Kawashima Y., Kitamura K., Suzuki K., Tsutsumi T. Increased expression of pendrin in eosinophilic chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Braz. J. Otorhinolaryngol., 2019, Vol. 85, no. 6, pp. 760-765.
- Jiao J., Duan S., Meng N., Li Y., Fan E., Zhang L. Role of IFN-gamma, IL-13, and IL-17 on mucociliary differentiation of nasal epithelial cells in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Clin. Exp. Allergy., 2016, Vol. 46, no. 3, pp. 449-460.
- Johnston L.K., Bryce P.J. Understanding interleukin 33 and its roles in eosinophil development. Front. Med., 2017, no. 4, 51. doi: 10.3389/fmed.2017.00051.
- Kaneko Y., Kohno T., Kakuki T., Takano K.I., Ogasawara N., Miyata R., Kikuchi S., Konno T., Ohkuni T., Yajima R., Kakiuchi A., Yokota S.-I., Himi T., Kojima T. The role of transcriptional factor p63 in regulation of epithelial barrier and ciliogenesis of human nasal epithelial cells. Sci. Rep., 2017, Vol. 7, no. 1, 10935. doi: 10.1038/s41598-017-11481-w.
- Kao S.S., Bassiouni A., Ramezanpour M., Finnie J., Chegeni N., Colella A.D., Chataway T.K., Wormald P.J., Vreugde S., Psaltis .AJ. Proteomic analysis of nasal mucus samples of healthy patients and patients with chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol., 2021, Vol. 147, no. 1, pp. 168-178.
- Kato A., Peters A.T., Stevens W.W., Schleimer R.P., Tan B.K., Kern R.C. Endotypes of chronic rhinosinusitis: Relationships to disease phenotypes, pathogenesis, clinical findings, and treatment approaches. Allergy, 2022, Vol. 77, no. 3, pp. 812-826.
- Kato K., Chang E.H., Chen Y., Lu W., Kim M.M., Niihori M., Hecker L., Kim K.C. MUC1 contributes to goblet cell metaplasia and MUC5AC expression in response to cigarette smoke in vivo. Am. J. Physiol. Lung Cell. Mol. Physiol., 2020, Vol. 319, no. 1, pp. 82-90.
- Kim D.K., Jin H.R., Eun K.M., Mo J.H., Cho S.H., Oh S., Cho D., Kim D.W. The role of interleukin-33 in chronic rhinosinusitis. Thorax, 2017, Vol. 72, no. 7, pp. 635-645.
- Klingler A.I., Stevens W.W., Tan B.K., Peters A.T., Poposki J.A., Grammer L.C., Welch K.C., Smith S.S., Conley D.B., Kern R.C., Schleimer R.P., Kato A. Mechanisms and biomarkers of inflammatory endotypes in chronic rhinosinusitis without nasal polyps. J. Allergy Clin. Immunol., 2021, Vol. 147, no. 4, pp. 1306-1317.
- Liao B., Cao P.P., Zeng M., Zhen Z., Wang H., Zhang Y.-N., Hu C.-Y., Ma J., Li Z.-Y., Song J., Liu J.-X., Peng L.-Y., Liu Y., Ning Q., Liu Z. Interaction of thymic stromal lymphopoietin, IL-33, and their receptors in epithelial cells in eosinophilic chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Allergy, 2015, Vol. 70, no. 9, pp. 1169-1180.
- Meng J., Zhou P., Liu Y., Liu F., Yi X., Liu S., Holtappels G., Bachert C., Zhang N. The Development of nasal polyp disease involves early nasal mucosal inflammation and remodelling. PLoS ONE, 2013, Vol. 8, no. 12, e82373. doi: 10.1371/journal.pone.0082373.
- Mueller S.K., Wendler O., Nocera A., Grundtner P., Schlegel P., Agaimy A., Iro H., Bleier B.S. Escalation in mucus cystatin 2, pappalysin-A, and periostin levels over time predict need for recurrent surgery in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Int. Forum Allergy Rhinol., 2019, Vol. 9, no. 10, pp. 1212-1219.
- Nagarkar D.R., Poposki J.A., Tan B.K., Comeau M.R., Peters A.T., Hulse K.E., Suh L.A., Norton J., Harris K.E., Grammer L.C., Chandra R.K., Conley D.B., Kern R.C., Schleimer R.P., Kato A. Thymic stromal lymphopoietin activity is increased in nasal polyps of patients with chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol., 2013, Vol. 132, no. 3, pp. 593-600.e12.
- Park S.K., Jin Y.D., Park Y.K., Yeon S.H., Xu J., Han R.N., Rha K.S. IL-25-induced activation of nasal fibroblast and its association with the remodeling of chronic rhinosinusitis with nasal polyposis. PLoS ONE, 2017, Vol. 12, no. 8, e0181806. doi: 10.1371/journal.pone.0181806.
- Shin H.W., Kim D.K., Park M.H., Eun K.M., Lee M., So D., Kong I.G., Mo J.-H., Yang M.-S., Jin H.R., Park J.W., Kim D.W. IL-25 as a novel therapeutic target in nasal polyps of patients with chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol., 2015, Vol. 135, no. 6, pp. 1476-1485.e7.
- Soler Z.M., Yoo F., Schlosser R.J., Mulligan J., Ramakrishnan V.R., Beswick D.M., Alt J.A., Mattos J.L., Payne S.C., Storck K.A., Smith T.L. Correlation of mucus inflammatory proteins and olfaction in chronic rhinosinusitis. Int. Forum Allergy Rhinol., 2020, Vol. 10, no. 3, pp. 343-355.
- Soyka M.B., Wawrzyniak P., Eiwegger T., Holzmann D., Treis A., Wanke K., Kast J.I., Akdis C.A. Defective epithelial barrier in chronic rhinosinusitis: The regulation of tight junctions by IFN-gamma and IL-4. J. Allergy Clin. Immunol., 2012, Vol. 130, no. 5, pp. 1087-1096.e10.
- Wise S.K., Laury A.M., Katz E.H., Den Beste K.A., Parkos C.A., Nusrat A. Interleukin-4 and interleukin-13 compromise the sinonasal epithelial barrier and perturb intercellular junction protein expression. Int. Forum Allergy Rhinol., 2014, Vol. 4, no. 5, pp. 361-370.
- Wu D., Yan B., Wang Y., Wang C., Zhang L. Prognostic and pharmacologic value of cystatin SN for chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J. Allergy Clin. Immunol., 2021, Vol. 148, no. 2, pp. 450-460.
- Xu X., Luo S., Li B., Dai H., Zhang J. IL-25 contributes to lung fibrosis by directly acting on alveolar epithelial cells and fibroblasts. Exp. Biol. Med., 2019, Vol. 244, no. 9, pp. 770-780.
- Yan B., Lou H., Wang Y., Li Y., Meng Y., Qi S., Wang M., Xiao L., Wang C., Zhang L. Epithelium-derived cystatin SN enhances eosinophil activation and infiltration through IL-5 in patients with chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J. Allergy Clin. Immunol., 2019, Vol. 144, no. 2, pp. 455-469.
Supplementary files


