<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="brief-report" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Russian Journal of Immunology</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Russian Journal of Immunology</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Российский иммунологический журнал</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">1028-7221</issn><issn publication-format="electronic">2782-7291</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Russian Society of Immunology</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">17010</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.46235/1028-7221-17010-UOA</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>SHORT COMMUNICATIONS</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Short Communication</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Usage of a biofluorescent <italic>Yersinia pestis</italic> strain and flow cytometry to assess phagocytic activity of blood leukocytes in an <italic>in vitro</italic> test</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Применение биофлуоресцентного штамма <italic>Yersinia pestis</italic> и проточной цитометрии для оценки фагоцитарной активности лейкоцитов крови в тесте <italic>in vitro</italic></trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Kravtsov</surname><given-names>A. L.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Кравцов</surname><given-names>А. Л.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD, MD (Biology), Leading Researcher, Department of Immunology</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>д.б.н., ведущий научный сотрудник отдела иммунологии</p></bio><email>klyueva.cvetlana@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Budanova</surname><given-names>A. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Буданова</surname><given-names>А. А.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Biology), Senior Researcher, Department of Immunology</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>к.б.н., старший научный сотрудник отдела иммунологии</p></bio><email>klyueva.cvetlana@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Klyueva</surname><given-names>Svetlana N.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Клюева</surname><given-names>Светлана Николаевна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Biology), Researcher, Department of Immunology</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>к.б.н., научный сотрудник отдела иммунологии</p></bio><email>klyueva.cvetlana@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Kozhevnikov</surname><given-names>V. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Кожевников</surname><given-names>В. А.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Junior Researcher, Department of Immunology</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>младший научный сотрудник отдела иммунологии</p></bio><email>klyueva.cvetlana@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Bugorkova</surname><given-names>S. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Бугоркова</surname><given-names>С. А.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD, MD (Medicine), Chief Researcher, Department of Immunology</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>д.м.н., главный научный сотрудник отдела иммунологии</p></bio><email>klyueva.cvetlana@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Russian Anti-Plague Institute “Microbe”</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФКУН «Российский противочумный институт “Микроб”» Роспотребнадзора</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="preprint" iso-8601-date="2025-07-30" publication-format="electronic"><day>30</day><month>07</month><year>2025</year></pub-date><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2026-04-22" publication-format="electronic"><day>22</day><month>04</month><year>2026</year></pub-date><volume>29</volume><issue>2</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>373</fpage><lpage>380</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2024-07-08"><day>08</day><month>07</month><year>2024</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2025-07-24"><day>24</day><month>07</month><year>2025</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2026, Kravtsov A.L., Budanova A.A., Klyueva S.N., Kozhevnikov V.A., Bugorkova S.A.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2026, Кравцов А.Л., Буданова А.А., Клюева С.Н., Кожевников В.А., Бугоркова С.А.</copyright-statement><copyright-year>2026</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Kravtsov A.L., Budanova A.A., Klyueva S.N., Kozhevnikov V.A., Bugorkova S.A.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Кравцов А.Л., Буданова А.А., Клюева С.Н., Кожевников В.А., Бугоркова С.А.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://rusimmun.ru/jour/article/view/17010">https://rusimmun.ru/jour/article/view/17010</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>Phagocytic activity (PA) of blood leukocytes for <italic>Yersinia pestis</italic> reflects the state of cellular anti-plague immunity in humans and laboratory animals. The purpose of this work was to evaluate the stimulatory effect of anti-plague vaccination on the PA of peripheral blood leukocytes by <italic>in vitro</italic> assay using flow cytometry and a biofluorescent strain of <italic>Y. pestis</italic> EV NIIEG pTurboGFP-B (KM2115), expressing the green fluorescent protein (GFP). We studied leukocytes the 100-μL samples of heparinized whole blood of mice, guinea pigs and humans that were vaccinated with live plague vaccine, as compared with non-vaccinated controls. The suspensions of living KM2115 cells were mixed to blood samples diluted with physiological solution. The result of the phagocytic reaction was assessed after 15 minutes by flow cytometry thus determining the proportion of active phagocytes in the granulocyte gate that showed intense fluorescence in the green area of the spectrum. The data analysis was carried out by the previously developed protocol based on experiments with killed plague microbes labeled with FITC dye. The obtained experimental data have suggested an opportunity of using a biofluorescent <italic>Y. pestis</italic> strain for the rapid determination of granulocyte PA by flow cytometry in microvolumes of whole blood from humans and animals without longer preliminary staining of microbes with a fluorescent dye. Increased values of phagocytic indices were registered for blood cells of people and animals vaccinated against plague, thus being consistent with data on the stimulatory effect of anti-plague vaccination on the phagocytic function of leukocytes. The use of a biofluorescent strain has simplified the procedure for modeling the interaction of macroorganism cells with plague microbes and subsequent assessment of neutrophil PA in whole peripheral blood, thus enabling its usage to characterize the magnitude of post-vaccination anti-plague immune response by an <italic>in vitro</italic> test.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Фагоцитарная активность (ФА) лейкоцитов крови по отношению к <italic>Yersinia pestis</italic> отражает состояние клеточного противочумного иммунитета у людей и лабораторных животных. Целью настоящей работы явилась оценка стимулирующего эффекта противочумной вакцинации на ФА лейкоцитов периферической крови в тесте <italic>in vitro</italic> c использованием проточной цитометрии и биофлуоресцентного штамма <italic>Y. pestis</italic> EV НИИЭГpTurboGFP-B (КМ2115), экспрессирующего зеленый флуоресцирующий белок GFP. Исследовали лейкоциты в 100 мкл цельной гепаринизированной крови мышей, морских свинок и людей, привитых и не привитых живой чумной вакциной. Фагоцитарную реакцию моделировали путем добавления живых клеток штамма КМ2115 в кровь, разведенную физиологическим раствором, и результат учитывали через 15 мин методом проточной цитометрии, определяя в гейте гранулоцитов долю активных фагоцитов, обладающих интенсивной флуоресценцией в зеленой области спектра. Анализ проводили согласно протоколу, разработанному нами ранее в опытах с убитым чумным микробом, меченым красителем ФИТЦ. Получены экспериментальные данные, свидетельствующие о возможности использования биофлуоресцентного штамма <italic>Y. pestis</italic> для быстрого определения ФА гранулоцитов методом проточной цитометрии в микрообъемах цельной крови человека и животных без длительного предварительного окрашивания микроба флуоресцирующим красителем. Для клеток крови привитых против чумы людей и животных зарегистрированы повышенные значения фагоцитарных индексов, что согласуется с данными о стимулирующем эффекте противочумной вакцинации на фагоцитарную функцию лейкоцитов. По данным проточной цитометрии, активные фагоциты крови мышей контрольной группы флуоресцировали в зеленой области спектра после контакта <italic>in vitro</italic> c живыми клетками штамма КМ 2115 интенсивнее фагоцитов морских свинок и человека, что могло быть связано с видовой особенностью состава мышиных лейкоцитарных протеаз и, как следствие, с повышенной экспрессией белка GFP в бактериях, поглощенных мышиными фагоцитами. Применение биофлуоресцентного штамма упрощает процедуру моделирования взаимодействия клеток макроорганизма с чумным микробом и последующую оценку ФА нейтрофилов в образцах цельной периферической крови, что может быть использовано для характеристики напряженности клеточного поствакцинального противочумного иммунитета в тесте <italic>in vitro</italic>.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>Yersinia pestis</kwd><kwd>blood leukocytes</kwd><kwd>phagocytic activity</kwd><kwd>green fluorescent protein</kwd><kwd>flow cytometry</kwd><kwd>cell immunity, in vitro test</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>Yersinia pestis</kwd><kwd>лейкоциты крови</kwd><kwd>фагоцитарная активность</kwd><kwd>зеленый флуоресцирующий белок</kwd><kwd>проточная цитометрия</kwd><kwd>оценка клеточного иммунитета in vitro</kwd></kwd-group><funding-group/></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Каральник Б.В., Дерябин П.Н., Денисова Т.Г., Пономарева Т.С., Жунусова Г.Б., Закарян С.Б., Мухамедьярова Р.Б. Выявление иммунной памяти на первом этапе антигенспецифического клеточного ответа при повторном введении живой чумной вакцины // Эпидемиология и вакцинопрофилактика, 2019. Т. 18, № 6. С. 26-33. [Karalnik B.V., Deryabin P.N., Denisova T.G., Ponomareva T.S., Zunussova G.B., Zakaryan S.B., Muchamedyarova R.B. Revelation of immune memory at the first stage of antigen-specific cell response after second introduction of the live plague vaccine. Epidemiologiya i vaktsinoprofilaktika = Epidemiology and Vaccinal Prevention, 2019, Vol. 18, no. 6, pp. 26-33. (In Russ.)]</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Клюева С.Н., Кравцов А.Л., Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Кожевников В.А., Гончарова А.Ю. Фагоцитарная и цитокинпродуцирующая активность лейкоцитов крови мышей линии ВALB/c, привитых против чумы на фоне иммуномодуляции полиоксидонием // Российский иммунологический журнал, 2019. Т. 13 (22), № 4. С. 1412-1420. [Klyueva S.N., Kravtsov A.L., Bugorcova S.N., Schukovskaya T.N., Kozhevnikov V.A., Goncharova A.Yu. Blood leukocyte phagocytic and cytokine producing activity of antiplague vaccinated BALB/c mice against the background of immunomodulation by polyoxidonium. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Immunology, 2019, Vol. 13 (22), no. 4, pp. 1412-1420. (In Russ.)] doi: 10.31857/S102872210007044-3.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Кравцов А.Л., Клюева С.Н., Кожевников В.А., Кудрявцева О.М., Бугоркова С.А. Влияние противочумной вакцинации на фагоцитарную активность гранулоцитов крови человека // Российский иммунологический журнал, 2021. Т. 24, № 1. С. 113-122. [Kravtsov A.L., Klyueva S.N., Kozhevnikov V.A., Kudryavtseva O.M., Bugorkova S.A. Effect of antiplague vaccination on phagocytic activity of human blood granulocytes. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Immunology, 2021, Vol. 24, no. 1, pp. 123-132. (In Russ.)] doi: 10.46235/1028-7221-166-EOA.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Куклева Л.М., Тучков И.В., Оглодин Е.Г., Девдариани З.Л., Морозов О.А., Кузнецов О.С., Германчук В.Г., Ерошенко Г.А. Получение штамма Yersinia pestis, продуцирующего флуоресцентный белок GFP, и перспективы его использования // Проблемы особо опасных инфекций, 2019. № 4. С. 61-66. [Kukleva L.M., Tuchkov I.V., Oglodin E.G., Devdariani Z.L., Morozov O.A., Kuznetsov O.S., Germanchuk V.G., Eroshenko G.A. Construction of Yersinia pestis strain producing fluorescent protein GFP and prospects of its usage. Problemy osobo opasnykh infektsiy = Problems of Particularly Dangerous Infections, 2019, no. 4, pp. 61-66. (In Russ.)]</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Основные требования к вакцинным штаммам чумного микроба: методические указания. М.: Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, 2002. 63 с. [Basic requirements for vaccine strains of the plague microbe: Guidelines]. Moscow: Federal Center for State Sanitary and Epidemiological Surveillance of the Ministry of Health of Russia, 2002. 63 p.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Ashe B.M., Zimmerman M. Comparison of the neutral proteinases from polymorphonuclear leukocytes of several experimental animal species. Bichem. Int., 1982, Vol. 5, no. 4, pp. 487-494.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Bi Y., Wang X., Han Y., Guo Z., Yang R. Yersinia pestis versus Yersinia pseudotuberculosis: effects on host macrophages. Scand. J. Immunol., 2012, Vol. 76, no. 6, pp. 541-551.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Dudte S.C., Hinnebusch B.J., Shannon J.G. Characterization of Yersinia pestis interactions with human neutrophils in vitro. Front. Cell. Infect. Microbiol., 2017, Vol. 7, 358. doi: 10.3389/fcimb.2017.00358.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Gupta-Wright A., Tembo D., Jambo K., Chimbayo E., Mvaya L., Caldwell S., Russell D.G., Mwandumba H.C. Functional analysis of phagocyte activity in whole blood from HIV/Tuberculosis – infected individuals using a novel flow cytometry based assay. Front. Immunol., 2017, Vol. 8, 1222. doi: 10.3389/fimmu.2017.01222.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Jansen W.T.M., Väkeväinen Anttila M., Käyhty H., Nahm M., Bakker N., Verhoef J., Verheul A.F. Comparison of a classical phagocytosis assay and a flow cytometry assay for assessment of the phagocytic capacity of sera from adults vaccinated with pneumococcal conjugate vaccine. Clin. Diag. Lab. Immunol., 2001, Vol. 8, no. 2, pp. 245-250.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Rosales C., Uribe-Querol E. Neutrophil activation by antibody receptors. In: Khajah M. (ed.). Neutrophis. London: Intechopen limited, 2019. 85 p.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Shannon J.G., Hinnebusch B.J. Antibody opsonization enhances early interactions between yersinia pestis and neutrophils in the skin and draining lymph node in a mouse model of bubonic plague. Infect. Immun., 2021, Vol. 89, no. 1, e00061-20. doi: 10.1128/IAI.00061-20.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Silva M.T. Bacteria-induced phagocyte secondary necrosis as a pathogenicity mechanism. J. Leukoc. Biol., 2010, Vol. 88, no. 5, pp. 885-896.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Spinner J.L., Cundiff J.A., Kobayashi S.D. Yersinia pestis type III secretion system-dependent inhibition of human polymorphonuclear leukocyte function. Infect. Immun., 2008, Vol. 76, no. 8, pp. 3754-3760.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Weinrauch Y., Drujan D., Shapiro S.D., Weiss J, Zychlinsky A. Neutrophil elastase targets virulence factors of enterobacteria. Nature, 2002, Vol. 417, no. 6884, pp. 91-94.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
