Динамические особенности гуморального звена иммунитета у пациентов с острым коронарным синдромом в зависимости от содержания B-лимфоцитов с фенотипом CD3-CD19+CD5+, болевших и не болевших COVID-19

Обложка
  • Авторы: Сафронова Э.А.1,2
  • Учреждения:
    1. ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ
    2. Медико-биологический университет инноваций и непрерывного образования ФГБУ «Государственный научный центр Российской Федерации – Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна» Федерального медико-биологического агентства
  • Выпуск: Том 27, № 2 (2024)
  • Страницы: 267-272
  • Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
  • Дата подачи: 31.03.2024
  • Дата принятия к публикации: 06.04.2024
  • Дата публикации: 12.08.2024
  • URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/16829
  • DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-16829-DFO
  • ID: 16829


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Целью работы явилось изучение динамических особенностей гуморального звена иммунитета у пациентов с острым коронарным синдромом в зависимости от содержания B-лимфоцитов с фенотипом CD3-CD19+CD5+, болевших и не болевших COVID-19. Проанализированы данные показателей гуморального иммунитета у мужчин в возрасте от 40 до 65 лет с острым коронарным синдромом, болевших и не болевших COVID-19, в зависимости от содержания B-лимфоцитов с фенотипом CD3-CD19+CD5+. Всем пациентам проводилась коронароангиография с дальнейшим стентированием коронарных артерий. Учитывали значения лимфоцитов с фенотипом CD45+CD3-CD19+ и наличие или отсутствие COVID-19 ранее.

Методом проточной цитометрии гейтировали по панлейкоцитарному маркеру CD45+ 2 группы: подгруппа В-лимфоцитов CD3-CD19+CD5+ и подгруппа В-лимфоцитов CD3-CD19+CD5-, B-лимфоциты (CD45+CD3-CD19+). Уровни общих IgA, IgG, IgM, C1-ингибитора, С3а и С5а компонентов комплемента методом иммуноферментного анализа.

После стентирования коронарных артерий В-лимфоциты (CD3-CD19+CD5+) значимо повысились в группе лиц, болевших COVID-19, с исходно низкими этими клетками (р < 0,01) и нормальными клетками (р < 0,05). У лиц, перенесших COVID-19 и не болевших этим заболеванием, с исходно пониженными CD3-CD19+CD5+ клетками значимо (р < 0,001 и р < 0,05 соответственно) выросли в динамике (р < 0,05) B-лимфоциты (CD45+CD3-CD19+), В-лимфоциты (CD3-CD19+CD5-). В группе больных, переболевших COVID-19, с нормальными CD3-CD19+CD5+ клетками в динамике снизилось (р < 0,01) относительное число B-лимфоцитов (CD45+CD3-CD19+) и CD3-CD19+CD5- клеток. У лиц, болевших ранее COVID-19, с повышенными CD3-CD19+CD5+ клетками в динамике значимо (р < 0,05) понизилось число B-лимфоцитов (CD45+CD3-CD19+), у не болевших COVID-19 с высокими вышеупомянутыми клетками достоверно (р < 0,05) увеличился иммуноглобулин А. Наиболее тяжелой в клиническом плане была группа лиц с пониженными CD3-CD19+CD5+В-клетками и COVID-19 в анамнезе.

Полный текст

Введение

COVID-19 повышает риск сердечно-сосудистых событий, в том числе острого коронарного синдрома (ОКС) – острого инфаркта миокарда (ОИМ) и нестабильной стенокардии. ОКС часто наблюдаются у пациентов с COVID-19 и могут влиять на клиническое течение и смертность пациентов. Хотя основной патогенез остается неясным, было высказано предположение о нескольких потенциальных механизмах, включая дисбаланс снабжения/потребления кислорода, прямое вирусное повреждение клеток, системную воспалительную реакцию с цитокин-опосредованным повреждением, микрососудистый тромбоз и эндотелиальную дисфункцию. COVID-19 способствует нестабильности атеросклеротических бляшек и образованию тромбов и может спровоцировать ОИМ 1-го типа [6]. Во время национальной вспышки 2020 года в Италии сопутствующий диагноз COVID-19 при ИМбпST был связан со значительно более высоким уровнем смертности [5].

Ретроспективное когортное исследование 335 взрослых с ОКС было проведено в Великобритании. За время пандемии увеличилась доля инфарктов миокарда с подъемом сегмента ST. Время ишемии росло с увеличением времени от появления симптомов до первого медицинского контакта со 191 минуты в контрольном периоде до 292 минут в первой волне (p = 0,06) и 271 минуты во второй волне (p = 0,06). Коронарография с последующей реваскуляризацией достоверно увеличилась с 55% в контрольном периоде реваскуляризации до 69% в первой волне (р < 0,001) и 74% во второй волне (р < 0,001) [8].

После заражения вирусным антигеном адаптивные иммунные реакции активируются главным образом за счет встреч вирусных частиц с антигенпрезентирующими клетками или В-клеточными рецепторами, которые индуцируют дальнейшие биологические взаимодействия для защиты хозяина от вируса. После того, как инфекция предотвращена, развивается иммунологическая память. Было показано, что клеточный иммунитет к SARS-CoV сохраняется даже через несколько лет после заражения, несмотря на необнаружимый гуморальный компонент [7]. Добрынина М.А. и др. изучали проблемы иммунопатологии у постковидных пациентов [1].

Согласно данным проанализированной литературы, недостаточно изучен гуморальный иммунитет у пациентов с острым коронарным синдромом, в том числе болевших COVID-19, что определяет актуальность проведенного исследования.

Целью работы явилось изучение динамических особенностей гуморального звена иммунитета у пациентов с острым коронарным синдромом в зависимости от содержания B-лимфоцитов с фенотипом CD3-CD19+CD5+, болевших и не болевших COVID-19.

Материалы и методы

Проанализированы данные показателей гуморального иммунитета у мужчин с ОКС, болевших и не болевших COVID-19, в зависимости от содержания B-лимфоцитов с фенотипом CD3-CD19+CD5+. Возраст больных был от 40 до 65 лет. Всем пациентам в зависимости от клинической ситуации в экстренном или отсроченном порядке проводилась коронароангиография с дальнейшим стентированием коронарных артерий на аппарате Innova JE и имплантация стентов с лекарственным покрытием Xience Alpine. Перед имплантацией стентов проводилась баллонная ангиопластика катетером Sapphire. Все больные подписывали информированное согласие (протокол Этического комитета ЮУГМУ Минздрава России № 9 от 11.09.2006 и протокол этического комитета ГАУЗ ОТКЗ ГКБ № 1 г. Челябинска № 12 от 10.10.2022). Иммунологические параметры были определены с помощью метода проточной цитометрии [2]. Учитывали значения лимфоцитов с фенотипом CD45+CD3-CD19+ и наличие или отсутствие COVID-19 ранее, пациентов поделили на группы. В группе перенесших в анамнезе COVID-19: группа со сниженным количеством В-клеток с фенотипом CD3-CD19+CD5+ (22 человека), средний возраст 55,91±1,41 года, группа с нормальным числом В-клеток с фенотипом CD3-CD19+CD5+ (22 человека), средний возраст 55,86+1,44; группа с повышенным изучаемым показателем (3 больных), средний возраст 55,33±2,13. Не болевшие COVID-19, но вакцинированные: группа (11 человек) – с пониженными, группа (7 пациентов), средний возраст 52,28±2,17 года – в пределах нормы и группа (4 человека), средний возраст 54,25±2,3 года – с повышенными В-лимфоцитами CD3-CD19+CD5+.

Методом проточной цитометрии гейтировали по панлейкоцитарному маркеру CD45+ 2 группы: подгруппа В-лимфоцитов CD3-CD19+CD5+ и подгруппа В-лимфоцитов CD3-CD19+CD5-, B-лимфоциты (CD45+CD3-CD19+), с помощью моноклональных антител компаний Beckman Coulter и BioLegend (США). Оценку иммунного статуса осуществляли методом проточной цитометрии на цитофлюориметре Navios (Beckman Coulter, США) по стандартизованной технологии оценки лимфоцитарного звена иммунитета [2, 3]. Уровни общих IgA, IgG, IgM, C1- ингибитора, С3а и С5а компонентов комплемента (АО «Вектор-Бест», ООО «Цитокин», Россия) методом иммуноферментного анализа на иммуноферментном анализаторе Multiscan FC Thermo Scientific (Китай). Исследование проводилось общепринятыми стандартизованными методами иммуноферментного анализа согласно протоколам производителей тест-систем.

Результаты и обсуждение

Из числа лиц с пониженными CD3-CD19+CD5+В-клетками с COVID-19 в анамнезе ОИМ с подъемом сегмента ST (ОИМспST) отмечался у 9 (40,91%) пациентов, ОИМ без подъема ST (ОИМбпST) – у 2 (9,09%), нестабильная стенокардия (НС) – у 11 (50%). Среднее число установленных стентов в настоящую госпитализацию 1,77±0,17. Кардиогенный шок отмечался у 2 (9,09%) больных, тромбозы стентов отмечались только в этой группе пациентов – у 2 (9,09%), и был один умерший. У больных с нормальными CD3-CD19+CD5+В-клетками с COVID-19 в анамнезе ОИМспST отмечался у 6 (27,27%) пациентов, ОИМбпST – у 8 (36,36%), НС – у 8 (36,36%), количество стентов – 1,68±0,16, кардиогенный шок у 1 (4,55%). У пациентов с повышенными CD3-CD19+CD5+В-клетками с COVID-19 в анамнезе ОИМспST наблюдался у 2 (66,67%) пациентов, НС – у 1 (33,33%), всем установлено по 1 стенту. У лиц с низкими CD3-CD19+CD5+В-клетками без COVID-19 в анамнезе ОИМспST был у 1 (25%) пациентов, НС – у 3 (75%), среднее количество стентов 1,75±0,22. У больных с нормальными CD3-CD19+CD5+ В-клетками без COVID-19 в анамнезе ОИМбпST наблюдался у 2 (28,57%), НС у 5 (71,43%), число стентов 1,57±0,18. У всех пациентов с повышенными CD3-CD19+CD5+ В-клетками без COVID-19 ранее была НС, всем имплантировано по 1 стенту в настоящую госпитализацию.

Наименьшее число В-лимфоцитов (CD45+CD3-CD19+) в относительном плане (8,90±1,16%) было меньше у лиц, болевших COVD-19 и имеющих пониженные В-клетки с фенотипом CD3-CD19+CD5+, что достоверно (р < 0,0001) отличалось от групп с нормальными (14,51±0,88%) и повышенными CD3-CD19+CD5+ клетками (15,13±2,09%), перенесшими COVID-19, и от лиц с нормальными (16,66±2,07%) и повышенными CD3-CD3-CD19+CD5+ клетками (22,4±3,95), не болевшими COVID-19. Достоверно (р < 0,05) в динамике в относительном плане повысились В-лимфоциты (CD45+CD3– CD19+) у больных с исходно низкими В-клетками с фенотипом CD3-CD19+CD5+, не болевшими COVID-19 (с 10,18±3,81% до 19,1±7,56%), и снизились относительно (р < 0,01) у пациентов с нормальными CD3-CD19+CD5+ клетками, перенесшими COVID-19. В абсолютных цифрах произошло в динамике возрастание этого показателя у больных с пониженными CD3-CD19+CD5+ клетками, перенесшими COVID-19: с 128,05±13,99 до 194,82±18,77, 106 кл/л (р < 0,001) и не болевшими COVID-19: с 124±54,48 до 283,5±54,47, 106 кл/л (р < 0,05).

Иммуноглобулин А достоверно повысился (р < 0,05) у пациентов, не болевших COVID-19 и имевших высокие CD3-CD19+CD5+клетки: с 1,24±0,52 г/л до 1,55±0,57 г/л. Наибольшие показатели общего иммуноглобулина М отмечались у больных, не болевших COVID-19, с нормальными CD3-CD19+CD5+ клетками (1,87±0,77 г/л) и значимо (р < 0,01) отличались от лиц без COVID-19 в анамнезе с исходно низкими (0,53±0,15 г/л) и нормальными CD3-CD19+CD5+ лимфоцитами (0,61±0,12 г/л). Иммуноглобулин G был минимальным у пациентов с повышенными CD3-CD19+CD5+ клетками, переболевших COVID-19 (5,51±3,08 г/л), значимо отличался от лиц, болевших COVID-19, с низкими (р < 0,01): 13,23±0,92 г/л и нормальными (р < 0,05) CD3-CD19+CD5+ лимфоцитами ((14,31±1,43 г/л), и не болевших COVID-19, с нормальным уровнем CD3-CD19+CD5+ клеток: 11,52±1,28 г/л (р < 0,05).

С1-ингибитор был наименьшим (176,93± 21,59 нг/мл) у лиц, не болевших COVID-19 с низкими CD3-CD19+CD5+ клетками и достоверно (р < 0,05) отличался от таковых с нормальным вышеупомянутым фенотипом клеток (227,38±18,71 нг/мл), а также статистически значимо вырос в динамике – 237,47±32,37 нг/ мл (р < 0,05). Также этот параметр был достоверно ниже у пациентов с нормальными CD3-CD19+CD5+ клетками, переболевшими COVID-19 (199,49±19,38 нг/мл), в сопоставлении с больными с вышеупомянутыми высокими клетками, не болевшими COVID-19: 307,65±135,37 г/ мл (р < 0,05).

Максимальное количество С3а-фрагмента комплемента (167,66±14,52 нг/мл) наблюдалось у лиц с нормальными CD3-CD19+CD5+ лимфоцитами по сравнению с пациентами с повышенными данными клетками, не болевшими COVID-19: 142,28±9,40 нг/мл (р < 0,05).

Минимальное содержание С5а фрагмента комплемента исходно отмечалось у пациентов с повышенными CD3-CD19+CD5+ лимфоцитами, не болевшими COVID-19 (29,33±7,02 нг/мл), и достоверно (р < 0,05) отличалось от пациентов с низкими CD3-CD19+CD5+ клетками, болевшими (51,93±3,87 нг/мл) и не болевшими COVID-19 (43,82±3,65 нг/мл).

Значимое повышение CD3-CD19+CD5+ лимфоцитов в динамике, как в абсолютном, так и относительном плане, произошло при исходно низких этих показателях у лиц, болевших COVID-19: с 12,77±1,17, 106 кл/л до 42,91±9,07, 106 кл/л (р < 0,01). Также значимо увеличился этот параметр в динамике у больных с исходно нормальными CD3-CD19+CD5+ клетками, перенесших ранее COVID-19: с 47,05±4,75, 106 кл/л до 66,27±12,11, 106 кл/л (р < 0,05).

CD3-CD19+CD5- значимо (р < 0,05) выросли в динамике у пациентов, болевших и не болевших COVID-19, с низкими CD3-CD19+CD5+ клетками: с 115,32±13,41 до 152,32±18,14, 106 кл/л и с 109,5±52,14 до 237,25±38,35, 106 кл/л соответственно. У пациентов с низкими CD3-CD19+CD5+ клетками, болевшие COVID-19, лимфоциты CD3-CD19+CD5- как в абсолютном, так и относительном плане значимо (р < 0,0001 – 0,05) отличались от других групп, кроме группы с низкими CD3-CD19+CD5+ клетками, не имевших в анамнезе COVID-19. Статистически достоверные различия CD3-CD19+CD5- наблюдались у лиц, не болевших COVID-19, с низкими CD3-CD19+CD5+ клетками (109,5±52,14, 106 кл/л) в сопоставлении с таковыми с нормальными вышеупомянутыми лимфоцитами, имевших (238,36±28,44, 106 кл/л) – р < 0,05 и не имевших – р < 0,01 (301,0±38,35, 106 кл/л) в анамнезе COVID-19, а также с повышенными CD3-CD19+CD5+ лимфоцитами, не болевшими COVID-19. Кроме того, регистрировались достоверные различия CD3-CD19+CD5- у больных с нормальными CD3-CD19+CD5+ клетками, перенесшими COVID-19, в сопоставлении с лицами с повышенными вышеупомянутыми клетками (436,25±157,47, 106 кл/л), не болевшими COVID-19 (р < 0,05).

Наиболее клинически тяжелой группой в нашем исследовании были пациенты, переболевшие COVID-19 и имеющие низкие B-лимфоциты с фенотипом CD3-CD19+CD5+, которые необходимы для выработки иммуноглобулинов, играющих роль в иммунологической защите, в том числе и при ОКС. Несмотря на раннюю реперфузию, у больных с ОИМспST может быть обширный некроз миокарда и значимое снижение функции желудочков. Работа Casarotti A.C.A. и соавт. [4] была посвящена значению подтипов B-лимфоцитов в обширности ОИМ и сократительной функции левого желудочка. Проводилась магнитно-резонансная томография (МРТ) сердца через 30 дней ОИМспST. В исследовании участвовали 120 лиц с ОИМпST. CD3-CD19+CD5+ клетки определялись в 1-й и 30-й дни от момента возникновения ОИМспST. Количество CD3-CD19+CD5+ лимфоцитов (клеток/мл) в 1-й день было связано с обширностью некроза миокарда, определенной с помощью МРТ сердца на 30-й день. CD3-CD19+CD5+ клетки были связаны с CD4+ Т-лимфоцитами на 1-й и 30-й дни, тогда как классические лимфоциты CD3-CD19+CD5- на 30-й день были предикторами фракции выброса левого желудочка. У больных с ОИМспST, несмотря на раннюю реперфузию, количество некроза миокарда и сердечный выброс были связаны с воспалительными реакциями, запускаемыми циркулирующими В-лимфоцитами. Таким образом, наши исследования и данные литературы вывили большую значимость определения различных субпопуляций В-лимфоцитов у пациентов с острым коронарным синдромом, перенесшим COVID-19, являющимся по сути проявлением постковидного синдрома с нарушением иммунной системы.

Выводы

  1. После стентирования коронарных артерий В-лимфоциты (CD3-CD19+CD5+) значимо повысились в группе лиц, болевших COVID-19, с исходно низкими этими клетками (р < 0,01) и нормальными клетками (р < 0,05).
  2. У лиц, перенесших COVID-19 и не болевших этим заболеванием, с исходно пониженными CD3-CD19+CD5+ клетками значимо (р < 0,001 и р < 0,05 соответственно) выросли в динамике (р < 0,05) B-лимфоциты (CD45+CD3-CD19+), В-лимфоциты (CD3-CD19+CD5-). В группе лиц, не болевших COVID-19, с низкими CD3-CD19+CD5+ лимфоцитами дополнительно в динамике увеличился С1-ингибитор (р < 0,05).
  3. В группе больных, переболевших COVID-19, с нормальными CD3-CD19+CD5+ клетками в динамике снизилось (р < 0,01) относительное число B-лимфоцитов (CD45+CD3-CD19+) и CD3-CD19+CD5- клеток.
  4. У лиц, болевших ранее COVID-19, с повышенными CD3-CD19+CD5+ клетками в динамике значимо (р < 0,05) понизилось число B-лимфоцитов (CD45+CD3-CD19+), у не болевших COVID-19 с высокими вышеупомянутыми клетками достоверно (р < 0,05) увеличился иммуноглобулин А.
  5. Наиболее тяжелой в клиническом плане была группа лиц с пониженными CD3-CD19+CD5+В-клетками и COVID-19 в анамнезе.
×

Об авторах

Э. А. Сафронова

ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ; Медико-биологический университет инноваций и непрерывного образования ФГБУ «Государственный научный центр Российской Федерации – Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна» Федерального медико-биологического агентства

Автор, ответственный за переписку.
Email: safronovaeleonora68@gmail.com

к.м.н., доцент кафедры поликлинической терапии и клинической фармакологии; ассистент кафедры терапии

Россия, Челябинск; Москва

Список литературы

  1. Добрынина М.А., Ибрагимов Р.В., Крицкий И.С., Верховская М.Д., Мосунов А.А., Сарапульцев Г.П., Зурочка А.В., Зурочка В.А., Сарапульцев А.П., Комелькова М.В., Рябова Л.В., Праскурничий Е.А. Постковидный синдром иммунопатологии. Характеристика фенотипических изменений иммунной системы у постковидных пациентов // Медицинская иммунология, 2023. Т. 25, № 4. С. 791-796. [Dobrynina M.A., Ibragimov R.V., Kritsky I.S., Verkhovskaya M.D., Mosunov A.A., Sarapultsev G.P., Zurochka A.V., Zurochka V.A., Sarapultsev A.P., Komelkova M.V., Ryabova L.V., Praskurnichiy E.A. Post-COVID immunopatology syndrome: characteristics of phenotypical changes in the immune system in post-COVID patients. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2023, Vol. 25, no. 4, pp. 791-796]. doi: 10.15789/1563-0625-PCI-2707.
  2. Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в медицине и биологии. 2-е изд., доп. и расш. Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2014. 576 с. [Zurochka A.V., Khaidukov S.V., Kudryavtsev I.V., Chereshnev V.A. Flow cytometry in medicine and biology. 2nd ed., supplemented and expanded. Yekaterinburg: RIO Ural Branch of the Russian Academy of Sciences, 2014. 576 p.
  3. Хайдуков С.В., Байдун Л.А., Зурочка А.В., Тотолян А.А. Стандартизованная технология «Исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметров-анализаторов» // Российский иммунологический журнал, 2014. Т. 8 (17), № 4. С. 974-992. [Khaidukov S.V., Baidun L.A., Zurochka A.V., Totolyan A.A. Standardized technology “Study of the subpopulation composition of peripheral blood lymphocytes using flow cytofluorimeter analyzers. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Immunology, 2014, Vol. 8 (17), no. 4, pp. 974-992. (In Russ.)]
  4. Casarotti A.C.A., Teixeira D., Longo-Maugeri I.M., Ishimura M.E., Coste M.E.R., Bianco H.T., Moreira F.T., Bacchin A.F., Izar M.C., Gonçalves I., Caixeta A., Szarf G., Pinto I.M., Fonseca F.A. Role of B lymphocytes in the infarcted mass in patients with acute myocardial infarction. Biosci. Rep., 2021, Vol. 41, no. 2, BSR20203413. doi: 10.1042/BSR20203413.
  5. de Luca L., Rosato S., D’Errigo P., Giordani B., Mureddu G.F., Badoni G., Seccareccia F., Baglio G. Covid-19 diagnosis and mortality in patients with non-ST-elevation myocardial infarction admitted in Italy during the national outbreak. Int. J. Cardiol., 2023, Vol. 1, no. 370, pp. 447-453.
  6. Esposito L., Cancro F.P., Silverio A., di Maio M., Iannece P., Damato A., Alfano C., de Luca G., Vecchione C., Galasso G. COVID-19 and acute coronary syndromes: from pathophysiology to clinical perspectives. Oxid. Med. Cell. Longev., 2021, Vol. 2021, 4936571. doi: 10.1155/2021/4936571.
  7. Primorac D., Vrdoljak K., Brlek P., Pavelić E., Molnar V., Matišić V., Erceg Ivkošić I., Parčina M. Adaptive immune responses and immunity to SARS-CoV-2. Front. Immunol., 2022, Vol. 13, 848582. doi: 10.3389/fimmu.2022.848582.
  8. Sutherland N., Dayawansa N.H., Filipopoulos B., Vasanthakumar S., Narayan O., Ponnuthurai F.A., van Gaal W. Acute coronary syndrome in the COVID-19 pandemic: reduced cases and increased ischaemic time. Heart Lung Circ., 2022, Vol. 31, no. 1, pp. 69-76.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Сафронова Э.А., 2024

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах