ЗАВИСИМОСТЬ ФЕНОТИПА Т-ЛИМФОЦИТОВ КРОВИ ОТ ИСХОДА РАСПРОСТРАНЕННОГО ГНОЙНОГО ПЕРИТОНИТА



Цитировать

Полный текст

Аннотация

С целью исследования фенотипического состава Т-лимфоцитов периферической крови у людей в динамике послеоперационноо лечения в зависимости от исхода распространенного гнойного перитонита (РГП) обследовано 38 пациента с острыми хирургическими заболеваниями и травмами органов брюшной полости, осложнившимися РГП. Забор крови производили перед операцией (дооперационный период), а также на 7, 14 и 21 сутки послеоперационного периода. Исследование фенотипа Т-лимфоцитов крови проводили методом проточной цитометрии. Установлено, что фенотип Т-лимфоцитов крови у больных РГП в до- и послеоперационном периоде значительно различается в зависимости от исхода заболевания. При благоприятном исходе РГП в дооперационном периоде выявляется повышенное количество общих Т-лимфоцитов, в том числе, с экспрессией CD62L, а также CD4+-Т-клеток, прежде всего за счет Treg (включая активированные клетки). Следовательно, повышение количества в крови Treg у больных РГП на пике заболевания является прогностическим признаком благоприятного исхода. Treg регулируют интенсивность воспалительного процесса, что приводит к улучшению клинического состояния больных РГП и, соответственно, повышает вероятность благоприятного исхода заболевания. Фенотип Т-лимфоцитов крови значительно меняется в динамике послеоперационного лечения. Независимо от исхода заболевания у больных значительно снижается содержание Т-клеток, экспрессирующих CD28 и CD62L, а также уровень Т-хелперов и Treg. Только при благоприятном исходе заболевания к концу наблюдаемого периода (21 сутки лечения) в крови повышается количество цитотоксических Т-лимфоцитов и Т-клеток с экспрессией CD57. Данные изменения фенотипического состава Т-лимфоцитов определяются применением антибиотиков и миграцией клеток в зону воспаления. 

Об авторах

В. Д. Беленюк

ФГБНУ Федеральный исследовательский центр «Красноярский научный центр
Сибирского отделения Российской академии наук», обособленное подразделение «НИИ медицинских проблем Севера»

Автор, ответственный за переписку.
Email: fake@neicon.ru

м. н. с. лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии,

Красноярск

Россия

А. А. Савченко

ФГБНУ Федеральный исследовательский центр «Красноярский научный центр
Сибирского отделения Российской академии наук», обособленное подразделение «НИИ медицинских проблем Севера»;
ФГАОУ ВО «Сибирский федеральный университет»

Email: aasavchenko@yandex.ru

д. м. н., профессор, руководитель лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии,

660022, Красноярск, ул. П. Железняка, 3Г

Россия

А. Г. Борисов

ФГБНУ Федеральный исследовательский центр «Красноярский научный центр
Сибирского отделения Российской академии наук», обособленное подразделение «НИИ медицинских проблем Севера»

Email: fake@neicon.ru

к. м. н., в. н. с. лаборатории клеточно-мо леку ляр ной физиологии и патологии,

Красноярск

Россия

И. В. Кудрявцев

ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины»

Email: fake@neicon.ru

к. б. н., с. н. с. отдела иммунологии,

Санкт-Петербург

Россия

Список литературы

  1. Савченко А. А., Здзитовецкий Д. Э., Борисов А. Г. Иммунометаболические нарушения при распространенном гнойном перитоните. Новосибирск, Наука, 2013, 9–34.
  2. Ding W., Wang K., Liu B., Fan X., Wang S., Cao J., Wu X., Li J. Open Abdomen Improves Survival in Patients With Peritonitis Secondary to Acute Superior Mesenteric Artery Occlusion. J. Clin. Gastroenterol. 2017, 51(9), e77-e82.
  3. Obi Y., Streja E., Mehrotra R., Rivara M. B., Rhee C. M., Soohoo M., Gillen D. L., Lau W. L., Kovesdy C. P., Kalantar-Zadeh K. Impact of Obesity on Modality Longevity, Residual Kidney Function, Peritonitis, and Survival Among Incident Peritoneal Dialysis Patients. Am. J. Kidney Dis. 2018, 71(6), 802–813.
  4. Mai M., Stengel S., Al-Herwi E., Peter J., Schmidt C., Rubio I., Stallmach A., Bruns T. Genetic variants of TRAF6 modulate peritoneal immunity and the risk of spontaneous bacterial peritonitis in cirrhosis: A combined prospective-retrospective study. Sci. Rep. 2017, 7(1), 4914.
  5. Mousa N., Besheer T., Abdel-Razik A., Hamed M., Deiab A. G., Sheta T., Eldars W. Can combined blood neutrophil to lymphocyte ratio and C-reactive protein be used for diagnosis of spontaneous bacterial peritonitis? Br. J. Biomed. Sci. 2018, 75(2), 71–75.
  6. Савченко А.А., Гвоздев И. И., Борисов А. Г., Черданцев Д. В., Первова О. В., Кудрявцев И. В., Мошев А. В. Особенности фагоцитарной активности и состояния респираторного взрыва нейтрофилов крови у больных распространенным гнойным перитонитом в динамике послеоперационного периода. Инфекция и иммунитет 2017, 7(1), 51–60.
  7. Cullaro G., Kim G., Pereira M. R., Brown R. S. Jr., Verna E. C. Ascites Neutrophil Gelatinase-Associated Lipocalin Identifies Spontaneous Bacterial Peritonitis and Predicts Mortality in Hospitalized Patients with Cirrhosis. Dig. Dis. Sci. 2017, 62(12), 3487–3494.
  8. Lee J. Y., Kim S. M., Park S. J., Lee S. O., Choi S. H., Kim Y. S., Woo J. H., Kim S. H. A rapid and non-invasive 2-step algorithm for diagnosing tuberculous peritonitis using a T cell-based assay on peripheral blood and peritoneal fluid mononuclear cells together with peritoneal fluid adenosine deaminase. J. Infect. 2015, 70(4), 356–366.
  9. Nemzek J. A., Fry C., Moore B. B. Adoptive transfer of fibrocytes enhances splenic T-cell numbers and survival in septic peritonitis. Shock 2013, 40(2), 106–114.
  10. Wang W., Shi Q., Dou S., Li G., Shi X., Jiang X., Wang Z., Yu D., Chen G., Wang R., Xiao H., Hou C., Feng J., Shen B., Ma Y., Han G. Negative regulation of Nod-like receptor protein 3 inflammasome activation by T cell Ig mucin-3 protects against peritonitis. Immunology 2018, 153(1), 71–83.
  11. Yu W., Yao D., Yu S., Wang X., Li X., Wang M., Liu S., Feng Z., Chen X., Li W., Wang L., Liu W., Ma J., Yu L., Tong C., Song B., Cui Y. Protective humoral and CD4(+) T cellular immune responses of Staphylococcus aureus vaccine MntC in a murine peritonitis model. Sci. Rep. 2018, 8(1), 3580.
  12. Кудрявцев И. В., Субботовская А. И. Опыт измерения параметров иммунного статуса с использованием шести-цветного цитофлуоримерического анализа. Медицинская иммунология 2015, 17(1), 19–26.
  13. Sutherland D. R., Ortiz F., Quest G., Illingworth A., Benko M., Nayyar R., Marinov I. High-sensitivity 5-, 6-, and 7-color PNH WBC assays for both Canto II and Navios platforms. Cytometry B Clin Cytom. 2018, 94(1), 1–15.
  14. Geng L., Liu J., Huang J., Lin B., Yu S., Shen T., Wang Z., Yang Z., Zhou L., Zheng S. A high frequency of CD8(+) CD28(–) T-suppressor cells contributes to maintaining stable graft function and reducing immunosuppressant dosage after liver transplantation. Int. J. Med. Sci. 2018, 15(9), 892–899.
  15. Langenhorst D., Haack S., Göb S., Uri A., Lühder F., Vanhove B., Hünig T., Beyersdorf N. CD28 costimulation of T helper 1 cells enhances cytokine release in vivo. Front Immunol. 2018, 9, 1060.
  16. Marangoni F., Zhang R., Mani V., Thelen M., Ali Akbar N. J., Warner R. D., Äij ö T., Zappulli V., Martinez G. J., Turka L. A., Mempel T. R. Tumor tolerancepromoting function of regulatory T cells is optimized by CD28, but strictly dependent on calcineurin. J. Immunol. 2018, 200(10), 3647–3661.
  17. Porciello N., Kunkl M., Tuosto L. CD28 between tolerance and autoimmunity: the side effects of animal models. F1000Res. 2018. 7, pii: F1000.
  18. Кудрявцев И.В., Борисов А. Г., Волков А. Е., Савченко А. А., Серебрякова М. К., Полевщиков А. В. Анализ уровня экспрессии CD56 и CD57 цитотоксическими Т-лимфоцитами различного уровня дифференцировки. Тихоокеанский медицинский журнал 2015, 2, 30–35.
  19. Кудрявцев И. В., Борисов А. Г., Кробинец И. И., Савчен ко А. А., Серебрякова М. К. Определение основных субпопуляций цитотоксических Т-лим фо цитов методом многоцветной проточной цитометрии. Медицинская иммунология 2015, 17(6), 525–538.
  20. Hu G., Wang S. Prognostic role of tumor-infiltrating CD57-positive lymphocytes in solid tumors: a metaanalysis. Oncotarget 2017, 9(8), 8111–8119.
  21. Sopper S., Mustjoki S., White D., Hughes T., Valent P., Burchert A., Gjertsen B. T., Gastl G., Baldauf M., Trajanoski Z., Giles F., Hochhaus A., Ernst T., Schenk T., Janssen J. J., Ossenkoppele G. J., Porkka K., Wolf D. Reduced CD62L expression on T cells and increased soluble CD62L levels predict molecular response to tyrosine kinase inhibitor therapy in early chronic-phase chronic myelogenous leukemia. J. Clin. Oncol. 2017, 35(2), 175–184.
  22. Spadaro M., Caldano M., Marnetto F., Lugaresi A., Bertolotto A. Natalizumab treatment reduces L-selectin (CD62L) in CD4+ T cells. J. Neuroinfl ammation 2015, 12, 146.
  23. Савченко А.А., Каспаров Э. В., Арутюнян С. С., Борисов А. Г., Кудрявцев И. В., Гвоздев И. И., Мошев А. В. Взаимосвязь содержания Th- и T-регуляторных клеток в крови и хемилюминесцентной активности нейтрофилов у больных хроническим эндометритом и аднекситом. Медицинская иммунология 2018, 20(1), 61–72.
  24. Schmid T., Falter L., Weber S., Müller N., Molitor K., Zeller D., Weber-Steffens D., Hehlgans T., Wajant H., Mostböck S., Männel D. N. Chronic inflammation increases the sensitivity of mouse Treg for TNFR2 costimulation. Front Immunol. 2017, 8, 1471.
  25. Sun G., Hou Y., Gong W., Liu S., Li J., Yuan Y., Zhang D., Chen Q., Yan X. Adoptive induced antigenspecific Treg cells reverse inflammation in collageninduced arthritis mouse model. Inflammation 2018, 41(2), 485–495.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Беленюк В.Д., Савченко А.А., Борисов А.Г., Кудрявцев И.В., 2019

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах