EXPERIENCE OF INTRA-LABORATORY QUALITY CONTROL APPLICATION AT DETERMINATION OF CLASS G ANTIBODIES TO MEASLES VIRUS BY IMMUNE-ENZYME ANALYSIS METHOD USING CONTROL DRUG



Cite item

Full Text

Abstract

Measles is a highly contagious infectious disease, fraught with serious complications and even death. The measles elimination program adopted by WHO has produced tangible benefits, but measles is still not defeated. At the stage of measles elimination, measures to increase the reliability of the results and quality of laboratory tests of antibodies to the measles virus become particularly relevant. The purpose of these studies was the validation of the drug “ILC measles-IgG” for the determination of measles antibodies of class G in serum by ELISA and the development of accounting parameters for qualitative and quantitative research options. The study material was commercial reagent kits for determining the concentration of antibodies to the measles virus VeсtoMeasles-IgG (JSC Vector-Best, Novosibirsk, Russia), which determined the concentration of the desired analyte in blood serums of 654 randomly selected conditionally healthy residents of Moscow and the Moscow region in age from 0 to 60 years. When conducting laboratory quality control, “ILC measles-IgG” (lyophilized preparation containing IgG to measles virus) was used to assess the intra- and inter-series convergence of the analysis. It is shown that certified on the basis of the reference laboratory of WHO / Europe of G. N. Gabrichevsky Research Institute for Epidemiology and Microbiology sample “ILC-measles IgG” is suitable for conducting internal laboratory quality control in determining measles IgG in serum using the “VectoMeasles-IgG” kits by the qualitative (OU) and quantitative (IU / ml) method. When assessing the convergence and reproducibility of the results of “ILC IgG-measles”, the CV values should not exceed 8% and 19%, respectively, and the OD values (OU) and IU / ml of “ILC measles-IgG” working solutions (native or diluted 1: 2) should not be in the range of values (points) of test calibration samples.

About the authors

M. A. Smerdova

G.N.Gabrichevsky Research Institute for Epidemiology and Microbiology;
CJSC “Vector-Best-Europe”

Author for correspondence.
Email: fake@neicon.ru

graduate student of the cytokine laboratory;

leading product specialist,

Moscow

Russian Federation

T. A. Mamaeva

G.N.Gabrichevsky Research Institute for Epidemiology and Microbiology

Email: fake@neicon.ru

PhD (Biology) Leading researcher, Laboratory of immunochemistry,

Moscow 

Russian Federation

M. A. Naumova

G.N.Gabrichevsky Research Institute for Epidemiology and Microbiology

Email: fake@neicon.ru

PhD, Senior Researcher, Laboratory of immunochemistry,

Moscow

Russian Federation

K. A. Koretsky

CJSC “Vector-Best-Europe”

Email: fake@neicon.ru

Senior Product Manager,

Moscow

Russian Federation

D. S. Ivanov

CJSC “Vector-Best-Europe”

Email: fake@neicon.ru

PhD (Biology), Product Specialist,

Moscow

Russian Federation

A. P. Toptygina

G.N.Gabrichevsky Research Institute for Epidemiology and Microbiology;
Moscow State University. M. V. Lomonosov

Email: toptyginaanna@rambler.ru

PhD, MD (Medicine), ScD, leading researcher of the cytokine laboratory;

Professor of the Department of Immunology, Faculty of Biology,

Moscow

Russian Federation

References

  1. Топтыгина А.П., Смердова М. А., Наумова М. А., Владимирова Н. П., Мамаева Т. А. Влияние особенностей популяционного иммунитета на структуру заболеваемости корью и краснухой. Инфекция и иммунитет 2018, 3, 341–348.
  2. Национальная программа элиминации кори и краснухи в Российской Федерации (2016–2020). Утв. руководителем федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека А. Ю. Поповой 28.12.2015 г., министром здравоохранения Российской Федерации В. Ю. Скворцовой 31.12.2015. Электронный доступ: http://rospotrebnadzor.ru/upload/iblock/bcf/programma_elyuminatsii_kori_i_krasnukhi_v_rf_2016_2020_gg.pdf.
  3. Приказ Минздрава России от 07.02.2000 № 45 «О системе мер по повышению качества клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения Российской Федерации». Электронный доступ: http://docs.cntd.ru/document/901755005.
  4. Приказ от 26 мая 2003 г. № 220. Об утверждении отраслевого стандарта «Правила проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов». Электронный адрес: http://docs.cntd.ru/document/901868423.
  5. Правила проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов ОСТ91500.13.0001–2003. Электронный адрес: http://www.hemltd.ru/export/sites/HemLtd/.galleries/publications_nd_kdl/23.Prikaz_26.05.03-220.pdf.
  6. И.Г.Нетесова, М. Р. Бобкова. Проведение внутрилабораторного контроля качества неколичественных методов иммуноферментного анализа. Справочник заведующего КДЛ 2011, 6, 9–15.
  7. Смердова М. А., Мамаева Т. А., Наумова М. А., Топтыгина А. П. Разработка стандартных образцов для внутрилабораторного контроля, используе мых при оценке специфических антител к кори и краснухе иммуноферментным методом. Российский иммунологический журнал 2016, 10(19), 2, 396–397.
  8. Янцев А. В. Выбор статистических критериев. Фолиант. Симферополь, 2012, 138.
  9. ГОСТ Р 53133.2–2008. Технологии лабораторные клинические. Контроль качества клинических лабораторных исследований. Москва, Стандартинформ, 2009, 20.
  10. Кочетов А. Г., Лянг О. В., Масенко В. П., Жиров И. В., Наконечников С. Н., Терещенко С. Н. Методы статической обработки медицинских данных. Москва, 2012, 42.
  11. ГОСТ Р 53022.3–2008. Требования к качеству клинических лабораторных исследований. Москва, Стандартинформ, 2009, 17.
  12. Kim J., Swantee C., Lee B., Gunning H., Chow A., Sidaway F., Sherlock C., Garceau R., Dimech W., Malloch L.; CAHCLSLaboratories. Identification of performance problems in a commercial human immunodefi ciency virus type 1 ensyme immunoassay by multiuser external quality control monitoring and real-time data analysis. J. Clin. Microbiol. 2009, vol. 47, no. 10, 3114–3120. doi: 10.1128/JCM.00892–09.
  13. WHO. Manual for the Laboratory-based Surveillance of Measles, Rubella, and Congenital Rubella Syndrome. 3-end. Geneva, Switzerland: WHO. – 2018. –P. 583. Available from: http://www.who.int/immunization/monitoring_surveillance/burden/laboratory/manual/en/
  14. ГОСТ Р 51352–2013. Медицинские изделия для диагностики ин витро. Москва, Стандартинформ, 2014, 23.
  15. Долгов В. В., Ованесов Е. Н., Щетникович К. А.Фотометрия в лабораторной практике. Фолиант, Москва, 2004, 142.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2019 Smerdova M.A., Mamaeva T.A., Naumova M.A., Koretsky K.A., Ivanov D.S., Toptygina A.P.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies