Трансформация профиля Т-лимфоцитов периферической крови при удалении туберкулемы легких
- Авторы: Бердюгина О.В.1
-
Учреждения:
- Институт иммунологии и физиологии Уральского отделения Российской академии наук
- Выпуск: Том 24, № 2 (2021)
- Страницы: 243-248
- Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- Дата подачи: 12.05.2021
- Дата принятия к публикации: 16.06.2021
- Дата публикации: 15.04.2021
- URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/983
- DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-983-TOT
- ID: 983
Цитировать
Полный текст
Аннотация
С учетом имеющихся данных о том, что субпопуляции Т-лимфоцитов периферической крови у больных с туберкулемами легких могут являться инструментом определения состояния пациента и динамического наблюдения за патологическим процессом, целью данного исследования стал мониторинг количества и функционального состояния Т-лимфоцитов периферической крови при резекции туберкулемы легких. Обследовано 22 человека с туберкулемами легких: 12 мужчин (54,5%) и 10 женщин (45,5%). В исследовании не участвовали больные с иммунозависимыми заболеваниями и ВИЧ. Всем обследованным пациентам была выполнена резекция образования малоинвазивным методом. Кровь исследовали дважды: до и через 5-7 суток после операции, определяли число Т-клеток (CD45+CD3+), их субпопуляций (CD3+CD4+, CD3+CD8+, CD3+CD4-CD8-, CD3+CD4+CD8+, CD3brightCD4-, CD3+CD16+CD56+, CD3+HLA-DR+, CD3+CD25+, CD3+CD25+HLA-DR+), а также отношение CD3+CD25+/CD3+HLA-DR+ (прибор Coulter Epicx XL, Beckman Coulter, USA). Дополнительно исследовали динамику численности B-клеток и NK-клеток. В связи с тем, что выборка была небольшой, распределение считали анормальным и использовали Т-критерий Вилкоксона (Wilcoxon Matched Pairs Test). Отличия считали значимыми при pw < 0,05. В работе использованы статистические программы Statistica v. 12.5.192.7 (StatSoft, USA) и GraphPad Prism v.8.0.2 (GraphPad Software, USA). Установлено, что удаление туберкулемы приводило к перераспределению численности Т-, В и NK-клеток в сравнении с дооперационным уровнем: популяция В-лимфоцитов увеличивалась на 35,8%, тогда как число NK-клеток снижалось на 18,9% (pw < 0,05). Несмотря на такие существенные изменения двух других популяций, общее количество Т-лимфоцитов снижалось незначительно, изменения варьировали в пределах 3,2% для абсолютных и 3,8% (pw < 0,05) для относительных значений соответственно. Динамика субпопуляционного состава Т-клеток выглядела иначе. В послеоперационном периоде отмечалось снижение на 4,8% числа CD3+CD4+ клеток, сокращение популяции CD3+CD8+ было более значимым и составляло 26,2% (pw < 0,05). Число дубль-позитивных клеток увеличивалось на 13,6% (pw < 0,05), число γσT-клеток снижалось на 20,8% (pw < 0,05), абсолютное количество TNK-клеток увеличивалось на 32,4%. Снижение в раннем послеоперационном периоде количества γσT-клеток может считаться благоприятным критерием в оценке состояния больного, поскольку в опубликованных ранее данных представлены сведения о повышенном количестве этих клеток у больных с туберкулемами. Другим благоприятным фактором может являться увеличение экспрессии Т-лимфоцитами HLA-DR, поскольку известно, что у больных с туберкулемами число таких клеток в периферической крови меньше, чем у здоровых людей. В целом, определение экспрессии активационных молекул показало, что происходит снижение числа Т-клеток, экспрессирующих CD25+ и растет количество CD3+HLA-DR+ клеток. Популяция Т-лимфоцитов, экспрессирующих одновременно и CD25+ и HLA-DR+ после операции смещается к физиологической норме. Полученные данные предполагается использовать для контроля за результатами лечения больных.
Ключевые слова
Об авторах
О. В. Бердюгина
Институт иммунологии и физиологии Уральского отделения Российской академии наук
Автор, ответственный за переписку.
Email: berolga73@rambler.ru
Бердюгина Ольга Викторовна – доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории иммунологии воспаления.
620049, Екатеринбург, ул. Первомайская, 106.
Тел.: 8 (904) 988-43-82.
РоссияСписок литературы
- Бердюгина О.В., Ершова А.В. Иммунологические реакции у больных с туберкулемой легкого в разных фазах активности // Российский иммунологический журнал, 2017. Т. 11, № 3. С. 363-365.
- Carvelli J., Piperoglou C., Bourenne J., Farnarier C., Banzet N., Demerle C., Gainnier M., Vely F. Imbalance of circulating innate lymphoid cell subpopulations in patients with septic shock. Front. Immunol., 2019, Vol. 10, 2179. doi: 10.3389/fimmu.2019.02179.
- Cosma C.L., Humbert O., Sherman D.R., Ramakrishnan L. Trafficking of superinfecting Mycobacterium organisms into established granulomas occurs in mammals and is independent of the Erp and ESX-1 mycobacterial virulence loci. J. Infect. Dis., 2008, Vol. 198, no. 12, pp. 1851-1855.
- Geraldes L., Morgado J., Almeida A., Todo-Bom A., Santos P., Paiva A., Cheira C., Pais M.L. Expression patterns of HLA-DR+ or HLA-DR- on CD4+/CD25++/CD127low regulatory T cells in patients with allergy. J. Investig. Allergol. Clin. Immunol., 2010, Vol. 20, no. 3, pp. 201-209.
- Gonzalez-Mancera M.S., Bolanos N.I., Salamanca M., Orjuela G.A., Rodriguez A.N., Gonzalez J.M. Percentages of CD4+CD8+ double-positive T lymphocytes in the peripheral blood of adults from a blood bank in Bogota. Turk. J. Haematol., 2020, Vol. 37, no. 1, pp. 36-41.
- Jagatia H., Tsolaki A.G. The kole of complement system and the immune response to tuberculosis infection. Medicina (Kaunas)., 2021, Vol. 57, no. 2, 84. doi: 10.3390/medicina57020084.
- Maphasa R.E., Meyer M., Dube A. The macrophage response to Mycobacterium tuberculosis and opportunities for autophagy inducing nanomedicines for tuberculosis therapy. Front. Cell. Infect. Microbiol., 2021, Vol. 10, 618414. doi: 10.3389/fcimb.2020.618414.
- Millar J.A., Butler J.R., Evans S., Mattila J.T., Linderman J.J., Flynn J.L., Kirschner D.E. Spatial organization and recruitment of non-specific T cells may limit T cell-macrophage interactions within Mycobacterium tuberculosis granulomas. Front. Immunol., 2021, Vol. 11, 613638. doi: 10.3389/fimmu.2020.613638.
- Morrison H., McShane H. Local pulmonary immunological biomarkers in tuberculosis. Front. Immunol., 2021, Vol. 12, 640916. doi: 10.3389/fimmu.2021.640916.
- Pagan A.J., Ramakrishnan L. Immunity and immunopathology in the tuberculous granuloma. Cold Spring Harb. Perspect. Med., 2014, Vol. 5, no. 9, a018499. doi: 10.1101/cshperspect.a018499.
- Patankar Y.R., Sutiwisesak R., Boyce S., Lai R., Lindestam Arlehamn C.S., Sette A., Behar S.M. Limited recognition of Mycobacterium tuberculosis-infected macrophages by polyclonal CD4 and CD8 T cells from the lungs of infected mice. Mucosal Immunol., 2020, Vol. 13, no. 1, pp. 140-148.
- Ruggiero S.M., Pilvankar M.R., Versypt A.N.F. Mathematical modeling of tuberculosis granuloma activation. Processes, 2017, Vol. 5, no. 4, 79. doi: 10.3390/pr5040079.
- Villegas-Valverde C.A., Kokuina E., Breff-Fonseca M.C. Estimating normal values of rare T-lymphocyte populations in peripheral blood of healthy Cuban adults. Medicc Rev., 2018, Vol. 20, no. 4, pp. 20-26.