Особенности иммунного статуса пациентов с острым коронарным синдромом, болевших и не болевших COVID-19, в зависимости от уровня В1-лимфоцитов

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Целью исследования явилось изучение показателей корпускулярных элементов крови и фагоцитарной активности нейтрофилов у лиц с острым коронарным синдромом в зависимости от того, перенесли они или нет COVID-19.

Обследовано 65 мужчин от 35 до 65 лет с острым коронарным синдромом (острый инфаркт миокарда и нестабильная стенокардия). Всем больным в течение 3 суток с момента поступления в стационар выполнена коронарография и стентирование коронарных артерий. Проведено обследование: общий анализ крови стандартизованным методом на гематологическом анализаторе Medonic M20 (Швеция). Из иммунологических показателей проводилась оценка фагоцитарной активности нейтрофилов. Спонтанная и индуцированная НСТ-активность нейтрофилов определялись методом световой микроскопии с использованием микроскопов Olimpus (Япония). Фагоцитарную активность нейтрофилов регистрировали по их способности поглощать частицы латекса. С помощью проточной цитометрии проводилось определение В1-лимфоцитов.

Все больные в зависимости от содержания В1-лимфоцитов и наличия или отсутствия CОVID-19 были разделены на 6 групп: болевшие CОVID-19 и имеющие пониженные В1-лимфоциты (1-я группа), нормальные (2-я группа), повышенные (3-я группа); не болевшие COVID-19 и имеющие пониженные В1-лимфоциты (4-я группа), нормальные (5-я группа), повышенные (6-я группа). Количество лейкоцитов в общем анализе крови достоверно выше, средний корпускулярный объем гемоглобина ниже у пациентов, перенесших СOVID-19. Уровень тромбоцитов был выше у пациентов, перенесших COVID-19, максимально с нормальными В1-лимфоцитами. Наибольшее число моноцитов регистрировалось у лиц с COVID-19 и нормальными В1-лимфоцитами, а минимальное – у больных 4-й группы. Наибольшее количество гранулоцитов отмечалось у лиц, не болевших COVID-19, со сниженными В1-лимфоцитами. Тромбоцитокрит был максимальным у пациентов 2-й группы. Активность и интенсивность фагоцитоза нейтрофилов была ниже у лиц, имевших COVID-19 в анамнезе и повышенные В1-лимфоциты. Фагоцитарное число нейтрофилов было минимальным у больных без COVID-19 и имевших низкие В1-лимфоциты. Максимальная спонтанная НСТ-активность регистрировалась у лиц с высокими В1-лимфоцитами и COVID-19 в анамнезе, а минимальная – с низкими В1-лимфоцитами и перенесенным COVID-19. НСТ спонтанный индекс также был наиболее высоким у больных 3-й группы. Минимальные НСТ-индуцированная активность и индекс были в 1-й группе. Наиболее тяжелые больные были в 1-й и 2-й группах. В 1-й группе: у 50% выставлен диагноз «острый инфаркт миокарда», у 2 пациентов случился тромбоз стентов, 4 погибли. У больных с нормальными В1 клетками и COVID-19 в анамнезе: 2 пациента скончались, у 2 – тромбоз стентов, у 65% регистрировался острый инфаркт миокарда. В этих группах были выше уровни тромбоцитов и ниже НСТ-активность, как спонтанная, так и индуцированная.

У пациентов с острым коронарным синдромом и перенесенным COVID-19, в сопоставлении с лицами без COVID-19 в анамнезе, отмечается увеличение числа лейкоцитов, тромбоцитов, снижение активности и интенсивности фагоцитоза нейтрофилов, спонтанной и стимулированной НСТ-активности, максимально выраженное у больных с низкими В1-лимфоцитами. Наиболее тяжелые в клиническом плане пациенты были в группе лиц, перенесших COVID-19 и имеющих низкие В1-лимфоциты.

Полный текст

Введение

Широко признано, что как врожденный, так и адаптивный иммунный ответ важны для инициации и прогрессирования атеросклероза, который в основном состоит из моноцитов, макрофагов, нейтрофилов, Т-лимфоцитов и В-лимфоцитов [7]. В работе Volodarsky I. и соавт. [10] было показано, что воспаление играет важную роль в нестабильности бляшек и острых коронарных синдромах. Циркулирующие регуляторные B-клетки снижены у пациентов с острым инфарктом миокарда (ОИМ) по сравнению с пациентами со стабильной стенокардией напряжения. Исследование Casarotti A.C.A. и соавт. [2] было направлено на оценку роли подтипов В-лимфоцитов и родственных цитокинов в массе инфаркта и фракции выброса левого желудочка, полученных с помощью магнитно-резонансной томографии сердца, выполненной через 30 дней после ОИМ с подъемом сегмента ST (ОИМпST). У пациентов с ОИМпST, несмотря на раннюю реперфузию, объем поражения и фракция выброса левого желудочка были связаны с воспалительными реакциями, запускаемыми циркулирующими В-лимфоцитами. Уровень В2-лимфоцитов явился предиктором изменения фракции выброса левого желудочка на 30-й день.

Целью исследования явилось изучение показателей корпускулярных элементов крови и фагоцитарной активности нейтрофилов у лиц с острым коронарным синдромом в зависимости от того, перенесли они или нет COVID-19.

Материалы и методы

Обследовано 65 пациентов с острым коронарным синдромом (острый инфаркт миокарда и нестабильная стенокардия). Всем больным в течение 3 суток с момента поступления в стационар выполнена коронарография (КАГ) и стентирование коронарных артерий. Возраст пациентов от 35 до 65 лет. Все мужчины. Кроме общеклинических исследований, выполнены КАГ, а также иммунологические обследования. Перед обследованием все пациенты подписывали информированное согласие (протокол Этического комитета ЮУГМУ Минздрава России № 9 от 11.09.2006 и протокол этического комитета ГАУЗ ОТКЗ ГКБ № 1 г. Челябинска № 12 от 10.10.2022).

Проведено обследование: общий анализ крови – лейкоцитарный, эритроцитарный и тромбоцитарный ростки кроветворения, количественный и качественный состав ростков кроветворения проведен стандартизованным методом на гематологическом анализаторе Medonic M20 (Швеция). Из иммунологических показателей проводилась оценка фагоцитарной активности частиц латекса диаметром 1,7 мкм нейтрофилами (активность фагоцитоза, интенсивность фагоцитоза, фагоцитарное число); спонтанная и индуцированная НСТ-активность нейтрофилов определялись морфологическим методом (световая микроскопия с использованием микроскопов Olimpus (Япония). Фагоцитарную активность нейтрофилов определяли по их способности поглощать частицы латекса.

С помощью проточной цитометрии проводилось определение В1-лимфоцитов [1]. Все больные в зависимости от содержания В1-лимфоцитов и наличия или отсутствия CОVID-19 были разделены на 6 групп: болевшие CОVID-19 и имеющие пониженные В1-лимфоциты (1-я группа), нормальные (2-я группа), повышенные (3-я группа); не болевшие COVID-19 и имеющие пониженные В1-лимфоциты (4-я группа), нормальные (5-я группа), повышенные (6-я группа).

Результаты и обсуждение

В таблице 1 представлены данные корпускулярных элементов крови и фагоцитарной активности нейтрофилов у пациентов с острым коронарным синдромом, болевших и не болевших COVD-19.

 

ТАБЛИЦА 1. ПОКАЗАТЕЛИ КОРПУСКУЛЯРНЫХ ЭЛЕМЕНТОВ КРОВИ И ФАГОЦИТАРНОЙ АКТИВНОСТИ НЕЙТРОФИЛОВ У ПАЦИЕНТОВ С ОСТРЫМ КОРОНАРНЫМ СИНДРОМОМ, ПЕРЕНЕСШИХ ИЛИ НЕТ COVID-19

TABLE 1. INDICATORS OF BLOOD CORPUSCULAR ELEMENTS AND PHAGOCYTIC ACTIVITY OF NEUTROPHILS IN PATIENTS WITH ACUTE CORONARY SYNDROME WITH OR WITHOUT COVID-19

Показатель / Index

Болевшие COVID-19 / Sick with COVID-19

Не болевшие COVID-19 / Not sick with COVID-19

В1-клетки

B1 cells

понижены

downgraded

(n = 19)

нормальные

normal

(n = 19)

повышены

raised

(n = 7)

понижены

downgraded

(n = 5)

нормальные

normal

(n = 11)

повышены

raised

(n = 4)

Лейкоциты крови, 109 кл/л

Blood leukocytes,

109 cells/L

8,500±0,960

р1, 2 = 0,049

10,863±1,090

р2, 5 = 0,049

9,685±0,821

10,740±2,743

8,254±0,767

10,025±1,423

Эритроциты крови, 1012

Blood erythrocytes, 109 cells/L

4,730±0,135

р1, 3 = 0,016

4,945±0,092

р2, 3 = 0,015

р2, 4 = 0,041

5,378±0,189

р3, 4 = 0,037

4,362±0,551

4,938±0,187

5,130±0,329

Средний корпускулярный объем гемоглобина, пг

Mean corpuscular volume of hemoglobin, pg

29,000±0,791

29,531±0,605

р2, 3 = 0,037

27,400±0,542

р3, 4 = 0,001

р3, 5 = 0,018

30,640±0,331

29,982±0,701

28,700±2,311

Средняя концентрация корпускулярного гемоглобина

Medium concentration corpuscular hemoglobin, g/L

334,684±2,648

р1, 5 = 0,017

337,263±2,871

332,571±3,046

р3, 5 = 0,013

333,600±7,724

343,545±2,495

338,250±6,860

Тромбоциты крови, 109 кл/л

Blood platelets,

109 cells/L

263,947±21,547

р1, 2 = 0,044

321,211±24,683

р2, 3 = 0,036

р2, 4 = 0,041

242,285±15,182

230,200±21,631

260,909±29,751

248,250±23,531

Лимфоциты, %

Lymphocytes, %

24,526±2,218

р1, 3 = 0,038

25,263±2,424

32,714±4,127

р3, 4 = 0,031

18,200±5,911

р4, 5 = 0,041

28,000±2,381

33,500±7,029

Моноциты, %

Monocytes, %

10,578±0,702

р1, 4 = 0,015

9,947±0,504

р2, 4 = 0,012

9,285±0,521

р3, 4 = 0,049

7,000±1,414

9,181±0,658

9,250±2,015

Сегментоядерные нейтрофилы, %

Segmented neutrophils, %

58,684±2,188

р1, 3 = 0,049

58,526±1,951

р2, 3 = 0,041

51,142±4,142

р3, 4 = 0,031

65,000±5,282

58,000±2,763

52,500±7,263

Палочкоядерные нейтрофилы, %

Stab neutrophils, %

3,647±0,921

3,326±0,579

4,157±1,327

8,000±3,361

р4, 5 = 0,013

2,281±0,502

2,025±1,064

Лимфоциты, 109 кл/л

Lymphocytes, 109 cells/L

1,897±0,179

р1, 2 = 0,026

р1, 3 = 0,003

р1, 6 = 0,004

2,586±0,293

р2, 4 = 0,040

3,005±0,265

р3, 4 = 0,003

р3, 5 = 0,020

1,480±0,360

р4, 5 = 0,039

р4, 6 = 0,003

2,239±0,214

р5, 6 = 0,021

3,067±0,111

Моноциты, 109 кл/л

Monocytes, 109 cells/L

0,867±0,091

1,113±0,159

р2, 4 = 0,049

р2, 5 = 0,049

0,894±0,084

р3, 4 = 0,049

0,636±0,142

0,743±0,073

0,980±0,291

Гранулоциты, 109 кл/л

Granulocytes, 109 cells/L

5,735±0,838

7,163±0,936

5,785±0,858

8,624±2,818

р4, 5 = 0,049

5,271±0,587

5,977±1,301

Ширина распределения клеток красной крови

Distribution width of red blood cells, %

15,263±0,412

р1, 2 = 0,044

р1, 3 = 0,003

14,463±0,308

р2, 3 = 0,011

р2, 4 = 0,046

13,114±0,311

р3, 4 = 0,005

р3, 5 = 0,008

р3, 6 = 0,007

15,800±0,944

14,763±0,449

15,275±0,796

Тромбоцитокрит, %

Thrombocytocrit, %

0,201±0,018

р1, 2 = 0,049

0,246±0,021

р2, 3 = 0,012

0,161±0,010

р3, 4 = 0,49

0,192±0,014

0,198±0,021

0,180±0,021

Средний объем тромбоцита, fL

Mean platelet volume, fL

7,757±0,243

р1, 3 = 0,014

р1, 4 = 0,043

7,763±0,212

р2, 3 = 0,007

р2, 4 = 0,026

6,800±0,129

р3, 4 = 0,001

р3, 5 = 0,004

8,640±0,181

р4, 5 = 0,036

р4, 6 = 0,009

7,845±0,259

7,275±0,449

Ширина распределения тромбоцита, %

Platelet distribution width, %

12,257±0,222

12,057±0,143

р2, 3 = 0,008

12,828±0,313

р3, 6 = 0,044

12,560±0,299

12,427±0,309

11,900±0,324

Активность фагоцитоза нейтрофилов,%

Neutrophil phagocytosis activity,%

40,631±4,614

р1, 5 = 0,027

48,944±4,402

р2, 3 = 0,021

32,857±3,931

р3, 4 = 0,006

р3, 5 = 0,002

54,400±6,353

54,727±4,653

41,000±14,335

Интенсивность фагоцитоза нейтрофилов, усл. ед.

Intensity of phagocytosis of neutrophils, conv. units

1,662±0,281

р1, 5 = 0,017

1,604±0,211

р2, 5 = 0,003

1,315±0,273

р3, 5 = 0,001

1,502±0,254

р4, 5 = 0,007

2,570±0,226

2,082±1,007

Фагоцитарное число нейтрофилов

Phagocytic number of neutrophils

3,665±0,364

р1, 4 = 0,049

р1, 5 = 0,024

3,150±0,201

р2, 3 = 0,049

р2, 4 = 0,049

р2, 5 = 0,001

р2, 6 = 0,011

3,914±0,508

р3, 4 = 0,029

2,360±0,487

р4, 5 = 0,007

р4, 6 = 0,022

5,027±0,595

4,500±0,777

Нитросиний тетразолий (НСТ) спонтанная активность, %

Nitroblue tetrazolium (NВT) spontaneous activity, %

25,947±3,442

р1, 3 = 0,005

р1, 5 = 0,049

35,000±3,110

р2, 3 = 0,047

49,428±10,947

28,000±5,186

35,727±5,454

26,250±6,156

НСТ спонтанный индекс, усл. ед.

NВT spontaneous index, conv. units

0,414±0,065

р1, 3 = 0,009

р1, 5 = 0,039

0,499±0,045

р2, 3 = 0,017

0,807±0,191

р3, 4 = 0,049

0,392±0,088

0,626±0,104

0,460±0,136

НСТ индуцированная активность, %

NВT induced activity, %

53,578±15,945

р1, 2 = 0,002

р1, 5 = 0,005

69,111±3,305

63,428±8,780

59,600±9,211

71,181±5,736

61,000±9,495

НСТ индуцированный индекс, усл. ед.

NВT induced index, conv. units

0,708±0,066

р1, 2 = 0,002

р1, 3 = 0,045

р1, 5 = 0,004

1,008±0,069

1,040±0,261

0,908±0,199

1,063±0,119

0,795±0,138

 

Согласно представленным данным, количество лейкоцитов в общем анализе крови достоверно (р < 0,05) выше, средний корпускулярный объем гемоглобина ниже (р < 0,05) у пациентов, перенесших СOVID-19. Уровень тромбоцитов был выше у пациентов, перенесших COVID-19, максимально с нормальными В1-лимфоцитами. Максимальное число моноцитов регистрировалось у лиц с COVID-19 и нормальными В1-лимфоцитами, а минимальное – у больных 4-й группы. Наибольшее количество гранулоцитов отмечалось у лиц, не болевших новой коронавирусной инфекцией (НКВИ) со сниженными В1-лимфоцитами. Тромбоцитокрит был максимальным у пациентов 2-й группы. Активность и интенсивность фагоцитоза нейтрофилов была ниже у лиц, имевших НКВИ в анамнезе и повышенные В1-лимфоциты. Фагоцитарное число нейтрофилов было минимальным у больных без НКВИ в анамнезе и имевших низкие В1-лимфоциты. Максимальная спонтанная НСТ-активность регистрировалась у лиц с высокими В1-лимфоцитами и НКВИ в анамнезе, а минимальная – с низкими В1-лимфоцитами и перенесенным COVID-19. НСТ спонтанный индекс также был наиболее высоким у больных 3-й группы. Минимальные НСТ-индуцированная активность и индекс были в 1-й группе. Что касается клинической характеристики, то в 4-й группе 20% имели инфаркт миокарда, не было тромбозов стентов и летальных исходов. В 5-й группе 5 из 11 больных имели ОИМ, не было умерших и тромбозов стентов. 6-я группа: нет летальных исходов, все пациенты только с нестабильной стенокардией. То, что касается лиц, перенесших COVID-19 в клиническом плане. 1-я группа – у 50% выставлен диагноз «ОИМ», у 2 пациентов случился тромбоз стентов, 4 погибли. У больных с нормальными В1-клетками и НКВИ в анамнезе: 2 пациента скончались, у 2 – тромбоз стентов, у 65% регистрировался ОИМ. В 3-й группе не было умерших, не было тромбозов стентов, ОИМ был у 5 из 7 больных. Поэтому в клиническом плане более тяжелые пациенты с перенесенной НКВИ и нормальными или пониженными В1-лимфоцитами. В этих группах были выше уровни тромбоцитов и ниже НСТ-активность, как спонтанная, так и индуцированная.

Monaco C. и соавт. [6] было показано, что существует аутореактивная В-клеточная память после ОИМ. Гибель сердечных клеток приводит к высвобождению антигенов, которые индуцируют гуморальный иммунный ответ, что приводит к накоплению иммуноглобулинов в бляшках и, в конечном итоге, к усилению атерогенеза в отдаленных участках.

Zouggari Y. и соавт. [11] проиллюстрировали в своем исследовании, что после ОИМ у мышей зрелые В-лимфоциты индуцируют мобилизацию и использование моноцитов в миокарде, что приводит к усилению повреждения тканей и ухудшению функции миокарда. Kim N.D. и соавт. [4] показали, что после ОИМ циркулирующие В-клетки продуцируют хемокин Ccl7, который мобилизует воспалительные моноциты из костного мозга в кровь, после чего они затем возвращаются в поврежденное сердце. Истощение В-клеток после ОИМ ограничивает повреждение миокарда и улучшает функцию миокарда.

В работе Mo F. и соавт. [5] было продемострировано, что активированные В-клетки участвуют в устойчивом состоянии воспаления миокарда и активации иммунной системы после ОИМ и могут влиять на метаболизм миокардиального коллагена после ОИМ путем секреции цитокинов. Кроме того, В-клетки способствуют экспрессии миокардиального коллагена типа I и типа III и повреждают функцию выброса левого желудочка. Cohen K.W. и соавт. [3] в своем исследовании проиллюстрировали, что связывающие и нейтрализующие антитела против SARS-CoV-2 демонстрируют двухфазный распад с увеличенным периодом полураспада более 200 дней, что предполагает образование долгоживущих плазматических клеток.

В своей работе Sosa-Hernandez V.A. и соавт. [9] показали, что тяжесть течения COVID-19 сопровождается изменениями в субпопуляциях В-клеток, либо незрелых, либо терминально дифференцированных. Кроме того, существующая взаимосвязь частот подмножества В-клеток с клиническими и лабораторными параметрами предполагает, что эти лимфоциты могут служить потенциальными биомаркерами и даже активными участниками адаптивного противовирусного ответа, направленного против SARS-CoV-2.

Выводы

  1. У пациентов с острым коронарным синдромом и перенесенным COVID-19, в сопоставлении с лицами без НКВИ в анамнезе, отмечается увеличение числа лейкоцитов, тромбоцитов, снижение активности и интенсивности фагоцитоза нейтрофилов, спонтанной и стимулированной НСТ-активности, максимально выраженное у больных с низкими В1-лимфоцитами.
  2. Наиболее тяжелые в клиническом плане пациенты были в группе лиц, перенесших COVID-19 и имеющих низкие В1-лимфоциты.
×

Об авторах

Элеонора Аркадьевна Сафронова

ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ

Автор, ответственный за переписку.
Email: safronovaeleonora68@gmail.com

к.м.н., доцент кафедры поликлинической терапии и клинической фармакологии ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ

Россия, г. Челябинск

Л. В. Рябова

ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ

Email: lianarabowa@rambler.ru

д.м.н., доцент, профессор кафедры безопасности жизнедеятельности, медицины катастроф, скорой и неотложной медицинской помощи ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ

Россия, г. Челябинск

А. В. Зурочка

ФГБУН «Институт иммунологии и физиологии» Уральского отделения Российской академии наук; ФГАОУ ВО «Южно-Уральский государственный университет (национальный исследовательский университет)»

Email: av_zurochka@mail.ru

д.м.н., профессор, заслуженный деятель науки РФ, ведущий научный сотрудник лаборатории иммунопатофизиологии ФГБУН «Институт иммунологии и физиологии» Уральского отделения Российской академии наук, г. Екатеринбург; заведующий лабораторией иммунобиотехнологии Российско-китайского центра ФГАОУ ВО «Южно-Уральский государственный университет (национальный исследовательский университет)»

Россия, г. Екатеринбург; г. Челябинск

Список литературы

  1. Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в медицине и биологии. 2 изд., доп. и расш. Екатеринбург:РИО УрО РАН, 2014. 576 с. [Zurochka A.V., Khaidukov S.V., Kudryavtsev I.V., Chereshnev V.A. Flow cytometry in medicine and biology. 2nd edition supplemented and expanded]. Yekaterinburg: RIO Ural Branch of the Russian Academy of Sciences, 2014. 576 p.
  2. Casarotti A.C.A., Teixeira D., Longo-Maugeri I.M., Ishimura M.E., Coste M.E.R., Bianco H.T., Moreira F.T., Bacchin A.F., Izar M.C., Gonçalves I., Caixeta A., Szarf G., Pinto I.M., Fonseca F.A. Role of B lymphocytes in the infarcted mass in patients with acute myocardial infarction. Biosci. Rep., 2021, Feb 26, Vol. 41, no 2, BSR20203413. doi: 10.1042/BSR20203413.
  3. Cohen K.W., Linderman S.L., Moodie Z., Czartoski J., Lai L., Mantus G., Norwood C., Nyhoff L.E., Edara V.V., Floyd K., De Rosa S.C., Ahmed H., Whaley R., Patel S.N., Prigmore B., Lemos M.P., Davis C.W., Furth S., O’Keefe J.B., Gharpure M.P., Gunisetty S., Stephens K., Antia R., Zarnitsyna V.I., Stephens D.S., Edupuganti S., Rouphael N., Anderson E.J., Mehta A.K., Wrammert J., Suthar M.S., Ahmed R., McElrath M.J.. Longitudinal analysis shows durable and broad immune memory after SARS-CoV-2 infection with persisting antibody responses and memory B and T cells. Cell Rep. Med., 2021, Vol. 2, no. 7, 100354. doi: 10.1016/j.xcrm.2021.100354.
  4. Kim N.D., Luster A.D. To B or not to B-that is the question for myocardial infarction. Nat. Med., 2013 Vol. 19, no. 10, pp. 1208-1210.
  5. Mo F., Luo Y., Yan Y., Li J., Lai S., Wu W. Are activated B cells involved in the process of myocardial fibrosis after acute myocardial infarction? An in vivo experiment. BMC Cardiovasc. Disord., 2021, Vol. 21, 5. doi: 10.1186/s12872-020-01775-9.
  6. Monaco C., Cole J. Does a myocardial infarction boost your (B cell) memory? Eur. Heart J., 2021, Vol. 42, no. 9, pp. 948-950.
  7. Moriya J. Critical roles of inflammation in atherosclerosis. J. Cardiol., 2019, Vol. 73, no. 1, pp. 22-27.
  8. Savchenko A.A., Tikhonova E., Kudryavtsev I., Kudlay D., Korsunsky I., Beleniuk V., Borisov A. TREC/KREC levels and T and B lymphocyte subpopulations in COVID-19 patients at different stages of the disease. Viruses, 2022, Vol. 14, no. 3, 646. doi: 10.3390/v14030646.
  9. Sosa-Hernández V.A., Torres-Ruíz J., Cervantes-Díaz R., Romero-Ramírez S., Páez-Franco J.C., Meza-Sánchez D.E., Juárez-Vega G., Pérez-Fragoso A., Ortiz-Navarrete V., Ponce-de-León A., Llorente L., Berrón-Ruiz L., Mejía-Domínguez N.R., Gómez-Martín D., Maravillas-Montero J.L. B cell subsets as severity-associated signatures in COVID-19 Patients. Front. Immunol., 2020, Vol. 11, 611004. doi: 10.3389/fimmu.2020.611004.
  10. Volodarsky I., Shimoni S., Haberman D., Mirkin V., Fabrikant Y., Yoskovich Mashriki T., Zalik A., George J. Circulating regulatory B-lymphocytes in patients with acute myocardial infarction: A pilot study. J. Cardiovasc. Dev. Dis., 2022, Vol. 10, no. 1, 2. doi: 10.3390/jcdd10010002.
  11. Zouggari Y., Ait-Oufella H., Bonnin P., Simon T., Sage A.P., Guérin C., Vilar J., Caligiuri G., Tsiantoulas D., Laurans L., Dumeau E., Kotti S., Bruneval P., Charo I.F., Binder C.J., Danchin N., Tedgui A., Tedder T.F., Silvestre J.S., Mallat Z. B lymphocytes trigger monocyte mobilization and impair heart function after acute myocardial infarction. Nat. Med., 2013, Vol. 19, no. 10, pp. 1273-1280.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Сафронова Э.А., Рябова Л.В., Зурочка А.В., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах