Влияние противочумной вакцинации на фагоцитарную активность гранулоцитов крови человека
- Авторы: Кравцов А.Л.1, Клюева C.Н.1, Кожевников В.А.1, Кудрявцева О.М.1, Бугоркова С.А.1
-
Учреждения:
- ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт “Микроб”»
- Выпуск: Том 24, № 1 (2021)
- Страницы: 123-132
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- Дата подачи: 06.05.2020
- Дата принятия к публикации: 22.03.2021
- Дата публикации: 15.01.2021
- URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/166
- DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-166-EOA
- ID: 166
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Противочумная вакцинация стимулирует фагоцитоз клеток Yersinia pestis лейкоцитами крови лабораторных животных, но ее влияние на фагоцитарную активность лейкоцитов человека по отношению к чумному микробу не изучалось. В настоящей работе с помощью проточной цитометрии исследовали фагоцитарную активность гранулоцитов крови привитых и не привитых против чумы людей, проживающих на территории природного очага чумы Российской Федерации, по отношению к Y. pestis, Escherichia coli и Staphylococcus aureus. Результаты фагоцитарной реакции учитывали в микрообъемах цельной крови. Иммуноферментным методом оценивали индуцированную продукцию лейкоцитами крови IFNγ, а также определяли в сыворотках крови титры специфических антител к капсульному антигену (F1) чумного микроба. Установлено, что у ранее не прививавшихся против чумы людей фагоцитарная активность гранулоцитов крови по отношению к Y. pestis в 3 раза ниже, чем у лиц, неоднократно привитых вакциной чумной живой, и в 5 раз ниже, чем в опытах с клетками E. сoli и S. aureus. Ежегодная вакцинация стимулирует поглотительную способность фагоцитов крови по отношению к чумному микробу in vitro. Индивидуальные значения фагоцитарных индексов имели прямую корреляционную связь с титрами сывороточных антител (r = 0,65, p = 0,0004) и с уровнем продукции IFNγ (г = 0,73, р = 0,0004). Таким образом, полученные данные подтвердили зависимость фагоцитарной активности лейкоцитов крови человека от вида возбудителя и позволили доказать связь активации фагоцитарной реакции у привитых вакциной чумной живой лиц по отношению к клеткам Y. pestis с другими показателями (специфические антитела к F1, индуцированная продукция IFNγ) эффективности прививки. Дальнейшие исследования в этом направлении позволят приблизить разработку информативного теста оценки напряженности противочумного иммунитета.
Об авторах
А. Л. Кравцов
ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт “Микроб”»
Email: rusrapi@microbe.ru
ORCID iD: 0000-0002-9016-6578
Кравцов Александр Леонидович – доктор медицинских наук, ведущий научный сотрудник отдела иммунологии
Саратов
РоссияC. Н. Клюева
ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт “Микроб”»
Автор, ответственный за переписку.
Email: klyueva.cvetlana@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5550-6063
Клюева Светлана Николаевна – кандидат биологических наук, научный сотрудник отдела иммунологифи
410005, г. Саратов, ул. Университетская, 46
В. А. Кожевников
ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт “Микроб”»
Email: rusrapi@microbe.ru
ORCID iD: 0000-0001-7267-7027
Кожевников Виталий Александрович – младший научный сотрудник отдела иммунологии
Саратов
О. М. Кудрявцева
ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт “Микроб”»
Email: rusrapi@microbe.ru
ORCID iD: 0000-0002-9894-3394
Кудрявцева Ольга Михайловна – кандидат биологических наук, старший научный сотрудник отдела иммунологии
Саратов
С. А. Бугоркова
ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт “Микроб”»
Email: rusrapi@microbe.ru
ORCID iD: 0000-0001-7548-4845
Бугоркова Светлана Александровна – доктор медицинских наук, заведующая отделом иммунологии
Саратов
Список литературы
- Балахонов С.В., Попова А.Ю., Мищенко А.И., Михайлов Е.П., Ежлова Е.Б., Демина Ю.В., Денисов А.В., Рождественский Е.Н., Базарова Г.Х., Щучинов Л.В., Зарубин И.В., Семенова Ж.Е., Маденова Н.М., Дюсенбаев Д.К., Ярыгина М.Б., Чипанин Е.В., Косилко С.А., Носков А.К., Корзун В.М. Случай заболевания человека чумой в Кош-Агачском районе Республики Алтай в 2015 г. Сообщение 1. Клинико-эпидемиологические и эпилоотологические аспекты // Проблемы особо опасных инфекций, 2016, № 1. С. 55-60.
- Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Микшис Н.И., Клюева С.Н., Кудрявцева О.М., Кравцов А.Л., Гончарова А.Ю., Кожевников В.А., Санджиев Д.Н., Конушева С.В., Савченко С.П., Бембеева Е.С., Щербакова С.А.. Кутырев В.В. Комплексное иммунологическое исследование вакцинированных живой чумной вакциной лиц, проживающих на территории Прикаспийского песчаного очага чумы в Республике Калмыкия // Эпидемиология и вакцинопрофилактика, 2018. Т. 17, № 3. С. 38-49.
- Долгушин И.И., Мезенцева Е.А., Савочкина А.Ю., Кузнецова Е.К. Нейтрофил как «многофункциональное устройство» иммунной системы // Инфекция и иммунитет, 2019. Т. 9, № 1. С. 9-38.
- Исачкова Л.М., Плехова Н.Г. К развитию представлений об антиинфекционной резистентности // Эпидемиология и инфекционные болезни, 2002. № 1. С. 11-15.
- Каральник Б.В., Дерябин П.Н., Денисова Т.Г., Пономарева Т.С., Жунусова Г.Б., Закарян С.Б., Мухамедьярова Р.Б. Выявление иммунной памяти на первом этапе антигенспецифического клеточного ответа при повторном введении живой чумной вакцины // Эпидемиология и вакцинопрофилактика, 2019. Т. 18, № 6. С. 26-33.
- Клюева С.Н., Кравцов А.Л., Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Кожевников В.А., Гончарова А.Ю. Фагоцитарная и цитокин-продуцирующая активность лейкоцитов крови мышей линии ВALB/c, привитых против чумы на фоне иммуномодуляции полиоксидонием // Российский иммунологический журнал, 2019. Т. 13 (22), № 4. С. 1412-1420.
- Корытов К.М., Войткова В.В., Дубровина В.И., Носков А.К., Мищенко А.И., Михайлов Е.П., Балахонов С.В., Щучинов Л.В. Оценка иммунологической эффективности вакцинации населения против чумы в Горно-Алтайском высокогорном природном очаге // Эпидемиология и вакцинопрофилактика, 2018. Т. 17 (6). С. 87-97.
- Кравцов А.Л., Кожевников В.А., Клюева С.Н., Кудрявцева О.М., Щуковская Т.Н., Микшис Н.И., Бугоркова С.А. Характеристика показателей клеточного иммунитета у вакцинированных против чумы лиц, проживающих на территории Прикаспийского песчаного природного очага чумы // Эпидемиология и вакцинопрофилактика, 2019. Т. 18 (3). С. 67-74.
- Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Ковалева С.В., Евглевский А.А., Нгуен Т.З.Л. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. Часть 1 // Инфекция и иммунитет, 2017. Т. 17 (3). С. 219-230.
- Олиферук Н.С., Пинегин Б.В. Определение фагоцитарного числа лейкоцитов крови по отношению к Staphylococcus aureus с помощью проточной цитометрии // Иммунология, 2007. № 4. С. 236-240.
- Уткин Д.В., Киреев М.Н., Гусева Н.П., Каплун Г.А., Куклев В.Е., Осина Н.А. Разработка биологического микрочипа для выявления антител к антигенам возбудителя чумы // Инфекция и иммунитет, 2019. Т. 9, № 2. С. 393-398.
- Фирстова В.В., Калмантаева О.В., Горбатов А.А., Кравченко Т.Б., Тюрин Е.А., Бондаренко Н.Л., Дятлов И.А., Караулов А.В. Оценка специфического гуморального и клеточного иммунитета у людей, периодически вакцинирующихся против чумы // Иммунология, аллергология, инфектология, 2015. № 3. С. 62-68.
- Cornelius C.A., Quenee L.E., Elli Р., Ciletti N.A., Schneewind O. Yersinia pestis IS1541 transposition provides for escape from plague immunity. Infect. Immunity, 2009, Vol. 77, no. 5, pp. 1807-1816.
- Cowan C., Philipovskiy A.V., Wulff-Strobel C., Ye Z., Straley S.C. Anti-LcrV antibody inhibits delivery of Yops by Yersinia pestis KIM 5 by directly promoting phagocytosis. Infect. Immunity, 2005, Vol. 73, no. 9, pp. 6127-6137.
- Dudte S.C., Hinnebusch B.J., Shannon J.G. Characterization of Yersinia pestis interactions with human neutrophils in vitro. Front Cell Infect. Microbiol., 2017, no. 7, pp. 358-365.
- Gupta-Wright A., Tembo D., Jambo K., Chimbayo E., Mvaya L., Caldwell S., Russell D.G., Mwandumba H.C. Functional analysis of phagocyte activity in whole blood from HIV/Tuberculosis – infected individuals using a novel flow cytometry-based assay. Front Immunol., 2017, no. 8, 1222. doi: 10.3389/fimmu.2017.01222.
- Hasui M., Hirabayashi Y., Kobayashi Y. Simultaneous measurement by flow cytometry of phagocytosis and hydrogen peroxide production of neutrophils in whole blood. J. Immunol. Methods, 1989, Vol. 117, pp. 53-58.
- Heinzelmann M., Gardner S.A., Mercer-Jones M., Roll A.J., Polk H. Quantitation of phagocytosis in human neutrophils by flow cytometry. Microbiol. Immunol., 1999, Vol. 43, no. 6, pp. 505-512.
- Ison C.A. Whole-blood model. Methods Mol. Med., 2001, Vol. 66, pp. 317-329.
- Jansen W.T.M., Väkeväinen-Anttila M., Käyhty H., Nahm M., Bakker N., Verhoef J., Snippe H., Verheul A.F. Comparison of a classical phagocytosis assay and a flow cytometry assay for assessment of the phagocytic capacity of sera from adults vaccinated with pneumococcal conjugate vaccine. Clin. Diag. Lab. Immunol., 2001, Vol. 8, no. 2, pp. 245-250.
- Kummer L.W., Szaba F.M., Parent M.A., Adamovicz J.A., Hill J., Johnson L.L., Smiley S.T. Antibodies and cytokines independently protect against pneumonic plague. Vaccine, 2008, Vol. 26, no. 52, pp. 6901-6907.
- Miliukienë V., Šiaurys A., Pilinkienë A., Chaaustova L. Flow cytometry measurement of Saccharomyces ceverisiae phagocytosis by neutrophils in mouse blood. Biologya, 2005, no. 3, pp. 69-73.
- Rosales C., Uribe-Querol E. Fc receptors: cell activators of antibody functions. Adv. Biosci. Biotechnol., 2013, Vol. 4, no. 4, pp. 21-33.
- Shannon J.G., Hasenkrug A.M., Dorward D.W., Nair V., Carmody A.B., Hinnebusch B.J. Yerinia pestis subverts the dermal neutrophil response in a mouse model of bubonic plague. mBio, 2013, Vol. 4, no. 5, e00170-13. doi: 10.1128/mBio.00170-13.
- Spinner J.L., Cundiff J.A., Kobayashi S.D. Yersinia pestis type III secretion system-dependent inhibition of human polymorphonuclear leukocyte function. Infect. Immun., 2008, Vol. 76, no. 8, pp. 3754-3760.
- White-Owen C., Alexander J.W., Sramkoski R.M., Babcock G.F. Rapid whole-blood microassay using flow cytometry for measuring neutrophil phagocytosis. J. Clin. Microbiol., 1992, Vol. 30, no. 8, pp. 2071-2076.