СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАЗЛИЧНЫХ ЭНДОТИПОВ ХРОНИЧЕСКИХ РИНОСИНУСИТОВ



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Резюме

Хронический риносинусит – это самая частая причина обращения к оториноларингологу. Несмотря на то, что данные по распространённости риносинуситов противоречивы, средний показатель распространенности в мире составил 11,61 ± 5,47% с разбросом от минимального показателя 1,01% до максимального показателя 57,6%. Основываясь на согласительный документ EPOS 2020 (European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyposis хронический риносинусит делят на полипозный и риносинусит без полипов. Особым видом является полипозный риносинусит, который характеризуется низким ответом на консервативную терапию и частые рецидивы после оперативного лечения. Эти серьезные медико-социальные особенности стимулируют на исследование патогенеза формирования носовых полипов. В данном обзоре представлены сведения об иммунологических особенностях и дисфункциях, приводящих к появлению хронического риносинусита с полипами или без них. Цель данного обзора – изучить, по данным литературы, влияние первой линии защиты, компонентов врожденного и приобретенного иммунитета на патогенез полипозного и неполипозного ХРС.

В статье представлен обзор зарубежной научной литературы. Авторами был проведён научный поиск по тематике иммунного ответа при формировании хронических риносинуситов с полипами и без них. Использовали соответствующие ключевые слова и фильтры, в поисковых системах PubMed и Google Scholar, по базам данных Scopus, Web of Science, MedLine, The Cochrane Library, EMBASE, Global Health, CyberLeninka. Подробно описано, что все звенья иммунитета не в полном объеме выполняют свои функции. Первой линией защиты слизистой полости носа и пазух является респираторный эпителий и мукоцилиарный клиренс, которые образуют механический барьер к инфекционным и другим проникающим агентам.  На следующем этапе в элиминации внешних патогенных агентов принимают участие клетки и система врожденного иммунного ответа, система комплемента. Презентация эпитопа антигена лимфоцитам формирует специализированный адаптивный иммунный ответ. Ремоделирование тканей является одним из наиболее актуальных аспектов патогенеза ХРС. Установлено, что при ПРС увеличивается синтез периостина, прогрессирует тканевая эозинофилия, растет выработка цистатина SN, IL-25 и уровень фибробластов, снижается уровень TLR2, TLR4, TGF-B и выработка коллагена, увеличивается внеклеточных нейтрофильных ловушек и уровень М1 макрофагов. Дальнейшее изучение звеньев иммунологического патогенеза ХРС позволит разработать персонифицированный алгоритм диагностики и лечения таких больных.

Об авторах

Анна Михайловна Лазарева

Федеральное Государственное Бюджетное Научное Учреждение Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера (НИИ МПС), Россия, г. Красноярск

Email: nuraaa@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0001-7972-3719

кандидат медицинских наук,

младший научный сотрудник лаборатории клинической патофизиологии

Россия

Ольга Валентиновна Смирнова

Федеральное Государственное Бюджетное Научное Учреждение Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера (НИИ МПС), Россия, г. Красноярск

Автор, ответственный за переписку.
Email: ovsmirnova71@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3992-9207

Д.м.н., профессор, заведующая лабораторией молекулярно-клеточной патофизиологии ФГБНУ НИИ МПС

 

Россия, Россия, г. Красноярск, ул. Партизана Железняка, 3г Телефон

Список литературы

  1. Bae, C.H.; Na, H.G.; Choi, Y.S.; Song, S.Y.; Kim, Y.D. Clusterin Induces MUC5AC Expression via Activation of NF-kappaB in Human Airway Epithelial Cells. Clin. Exp. Otorhinolaryngol. 2018, no 11, pp. 124–132., doi: 10.21053/ceo.2017.00493.
  2. Boita, M.; Bucca, C.; Riva, G.; Heffler, E. Release of Type 2 Cytokines by Epithelial Cells of Nasal Polyps. J. Immunol. Res. 2016, no 2016, pp. 264-287., http://dx.doi.org/10.1155/2016/2643297
  3. Boscke, R.; Vladar, E.K.; Konnecke, M.; Husing, B.; Linke, R.; Pries, R.; Reiling, N.; Axelrod, J.D.; Nayak, J.V.; Wollenberg, B. Wnt Signaling in Chronic Rhinosinusitis with Nasal Polyps. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2017, no 56, pp. 575–584., doi: 10.1056/NEJMoa1713976.
  4. Cho, D.Y.; Nayak, J.V.; Bravo, D.T.; Le, W.; Nguyen, A. Expression of dual oxidases and secreted cytokines in chronic rhinosinusitis. Int. Forum Allergy Rhinol. 2013, no 3, pp. 376–383., doi: 10.1002/alr.21133. Epub 2012 Dec 21.
  5. Du, K.; Wang, M.; Zhang, N.; Yu, P.; Wang, P.; Li, Y. Involvement of the extracellular matrix proteins periostin and tenascin C in nasal polyp remodeling by regulating the expression of MMPs. Clin. Transl. Allergy 2021, 11, e12059., doi: 10.33029/1816-2134-2023-44-3-379-390
  6. Ebenezer, J.A.; Christensen, J.M.; Oliver, B.G.; Oliver, R.A.; Tjin, G.; Ho, J.; Habib, A.R. Periostin as a marker of mucosal remodelling in chronic rhinosinusitis. Rhinology 2017, no 55, pp. 234–241., doi: 10.1016/j.alit.2022.08.006.
  7. Fokkens, W.J.; Lund, V.J.; Hopkins, C.; Hellings, P.W.; Kern, R.; Reitsma, S.; Toppila-Salmi, S.; Bernal-Sprekelsen, M.; Mullol, J.; Alobid, I.; et al. European Position Paper on Rhinosinusitis and Nasal Polyps 2020. Rhinology 2020, no 58, pp. 1–464., doi: 10.4193/Rhin20.600.
  8. Ito, T.; Ikeda, S.; Asamori, T.; Honda, K.; Kawashima, Y. Increased expression of pendrin in eosinophilic chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Braz. J. Otorhinolaryngol. 2019, no 85, pp. 760–765., doi: 10.1016/j.bjorl.2018.07.005.
  9. Jiao, J.; Duan, S.; Meng, N.; Li, Y.; Fan, E. Role of IFN-gamma, IL-13, and IL-17 on mucociliary differentiation of nasal epithelial cells in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Clin. Exp. Allergy 2016, no 46, pp. 449–460., doi: 10.1111/cea.12644.
  10. Johnston, L.K.; Bryce, P.J. Understanding Interleukin 33 and Its Roles in Eosinophil Development. Front. Med. 2017, no 4, pp. 51., https://doi.org/10.3389/fmed.2017.00051
  11. Kaneko, Y.; Kohno, T.; Kakuki, T.; Takano, K.I.; Ogasawara, N.; Miyata, R.; Kikuchi, S. The role of transcriptional factor p63 in regulation of epithelial barrier and ciliogenesis of human nasal epithelial cells. Sci. Rep. 2017, no 7, pp. 10-15., doi: 10.1038/s41598-017-11481-w
  12. Kao, S.S.; Bassiouni, A.; Ramezanpour, M.; Finnie, J.; Chegeni, N.; Colella, A.D.; Chataway, T.K.; Wormald, P.J. Proteomic analysis of nasal mucus samples of healthy patients and patients with chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol. 2021, no 147, pp. 168–178., doi: 10.1016/j.jaci.2020.06.037.
  13. Kato, A.; Peters, A.T.; Stevens, W.W.; Schleimer, R.P. Endotypes of chronic rhinosinusitis: Relationships to disease phenotypes, pathogenesis, clinical findings, and treatment approaches. Allergy 2022, no 77, pp. 812–826., doi: 10.1111/all.15074.
  14. Kato, K.; Chang, E.H.; Chen, Y.; Lu, W.; Kim, M.M.; Niihori, M. MUC1 contributes to goblet cell metaplasia and MUC5AC expression in response to cigarette smoke in vivo. Am. J. Physiol. Lung Cell. Mol. Physiol. 2020, no 319, pp. 82–L90., doi: 10.1152/ajplung.00049.2019.
  15. Kim, D.K.; Jin, H.R.; Eun, K.M.; Mo, J.H.; Cho, S.H.; Oh, S.The role of interleukin-33 in chronic rhinosinusitis. Thorax 2017, no 72, pp. 635–645., doi: 10.3390/diagnostics12102344
  16. Klingler, A.I.; Stevens, W.W.; Tan, B.K.; Peters, A.T.; Poposki, J.A.; Grammer, L.C.; Welch, K.C.; Smith, S.S.; Conley, D.B.; Kern, R.C.; et al. Mechanisms and biomarkers of inflammatory endotypes in chronic rhinosinusitis without nasal polyps. J. Allergy Clin. Immunol. 2021, no 147, pp. 1306–1317., doi: 10.1056/NEJMoa2028395.
  17. Liao, B.; Cao, P.P.; Zeng, M.; Zhen, Z.; Wang, H. Interaction of thymic stromal lymphopoietin, IL-33, and their receptors in epithelial cells in eosinophilic chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Allergy 2015, no 70, pp.1169–1180., doi: 10.1111/all.12667. Epub 2015 Jul 6.
  18. Luo, S.; Li, B. IL-25 contributes to lung fibrosis by directly acting on alveolar epithelial cells and fibroblasts. Exp. Biol. Med. 2019, no 244, pp. 770–780., doi: 10.1177/1535370219843827.
  19. Meng, J.; Zhou, P.; Liu, Y.; Liu, F.; Yi, X.; Liu, S.; Holtappels, G.; Bachert, C.; Zhang, N. The development of nasal polyp disease involves early nasal mucosal inflammation and remodelling. Braz. j. otorhinolaryngol. 2013, no 1, pp. 3-39., https://doi.org/10.1016/j.bjorl.2023.01.007
  20. Mueller, S.K.; Wendler, O.; Nocera, A.; Grundtner, P. Escalation in mucus cystatin 2, pappalysin-A, and periostin levels over time predict need for recurrent surgery in chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Int. Forum Allergy Rhinol. 2019, 9, 1212–1219., doi: 10.1002/alr.22407. Epub 2019 Aug 20.
  21. Nagarkar, D.R.; Poposki, J.A.; Tan, B.K. Thymic stromal lymphopoietin activity is increased in nasal polyps of patients with chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol. 2013, no 132, pp. 593–600., https://doi.org/10.1016/j.jaci.2013.04.005
  22. Park, S.K.; Jin, Y.D.; Park, Y.K.; Yeon, S.H.; Xu, J.; Han, R.N.; Rha, K.S. IL-25-induced activation of nasal fibroblast and its association with the remodeling of chronic rhinosinusitis with nasal polyposis. PLoS ONE 2017, 12, e0181806., doi: 10.1371/journal.pone.0181806
  23. Shin, H.W.; Kim, D.K.; Park, M.H.; Eun, K.M.; Lee, M.; So, D.; Kong, I.G. IL-25 as a novel therapeutic target in nasal polyps of patients with chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol. 2015, no 135, pp. 1476–1485., doi: 10.1016/j.jaci.2015.01.003
  24. Soler, Z.M.; Yoo, F.; Schlosser, R.J.; Mulligan, J.; Ramakrishnan, V.R.; Beswick, D.M.; Alt, J.A.; Mattos, J.L. Correlation of mucus inflammatory proteins and olfaction in chronic rhinosinusitis. Int. Forum Allergy Rhinol. 2020, no 10, pp. 343–355., doi.org/10.1016/j.jaci.2021.01.021
  25. Soyka, M.B.; Wawrzyniak, P.; Eiwegger, T.; Holzmann, D.; Treis, A.; Wanke, K.efective epithelial barrier in chronic rhinosinusitis: The regulation of tight junctions by IFN-gamma and IL-4. J. Allergy Clin. Immunol. 2012, no 130, pp. 1087–1096., doi: 10.1016/j.jaci.2012.05.052.
  26. Wise, S.K.; Laury, A.M.; Katz, E.H.; Den Beste, K.A. Interleukin-4 and interleukin-13 compromise the sinonasal epithelial barrier and perturb intercellular junction protein expression. Int. Forum Allergy Rhinol. 2014, no 4, pp. 361–370., doi: 10.1002/alr.21298. Epub 2014 Feb 7.
  27. Wu, D.; Yan, B.; Wang, Y.; Wang, C.; Zhang, L. Prognostic and pharmacologic value of cystatin SN for chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J. Allergy Clin. Immunol. 2021, no 148, pp. 450–460., doi: 10.1016/j.jaci.2021.01.036.
  28. Yan, B.; Lou, H.; Wang, Y.; Li, Y.; Meng, Y.; Qi, S. Epithelium-derived cystatin SN enhances eosinophil activation and infiltration through IL-5 in patients with chronic rhinosinusitis with nasal polyps. J. Allergy Clin. Immunol. 2019, no 144, pp. 455–469., doi.org/10.1016/j.jaci.2019.03.026

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Лазарева А.М., Смирнова О.В.,

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах