НОВЫЙ ПОДХОД К АНАЛИЗУ КЛЕТОЧНОГО ЦИКЛА Т-ЛИМФОЦИТОВ МЕТОДОМ ПРОТОЧНОЙ ЦИТОМЕТРИИ



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Резюме

Способность Т-лимфоцитов к интенсивной пролиферации является основой формирования как естественного, так и поствакцинального иммунитета. Соответственно, нарушение деления Т-клеток может отражаться на восприимчивости человека к заболеваниям и эффективности вакцинации. Подход, который позволит определять не только долю делящихся клеток и активность пролиферации, но и фазы клеточного цикла, значительно расширит возможности исследования причин и механизмов нарушения деления Т-лимфоцитов.

Цель. Апробировать новый подход к анализу клеточного цикла Т-лимфоцитов разной степени зрелости с использованием проточной цитометрии.

Материалы и методы. Объектом исследования служила периферическая кровь, полученная от здоровых доноров. Мононуклеарные клетки периферической крови выделяли центрифугированием в градиенте плотности диаколла стандартным методом и стимулировали фитогемагглютинином, после чего культивировали в течение 4 суток (37оС, 5 % CO2). Активированные лейкоциты окрашивали витальным красителем LIVE/DEAD Fixable Violet Dead Cell Stain и антителами CD3 BV605, CD4 PE, CD8 BV510, CCR7 PE/Cy7 и CD45RO APC-eF780. Клетки фиксировали и пермеабилизировали, после чего окрашивали антителами к pRb AF488 и pHH3 AF647, а также красителем DAPI. Анализ клеток проводили на проточном цитометре CytoFLEX S.

Результаты. Установлено, что предложенный подход позволяет различать Т-лимфоциты, находящиеся в G0, G1, S, G2 и M-фазах клеточного цикла. Более того, разработанная панель флуоресцентных красителей и антител позволяет одновременно идентифицировать CD4+ и CD8+ Т-клетки различной степени зрелости. Так, в пилотном исследовании было установлено количество CD4+ и CD8+ Т-лимфоцитов, вступивших в активные фазы клеточного цикла, и особенности их распределения по фазам. Также были выявлены отличия паттернов пролиферации наивных CD4+ и CD8+ Т-лимфоцитов, соответствующих клеток центральной и эффекторной памяти, а также терминальных эффекторов.

Выводы. Предложенный метод позволяет проводить комплексный анализ клеточного цикла CD4+ и CD8+ Т-лимфоцитов разной степени зрелости с использованием проточной цитометрии.

Об авторах

Евгения Владимировна Сайдакова

«Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской академии наук», Пермь, Россия

Автор, ответственный за переписку.
Email: radimira@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-4342-5362
SPIN-код: 8927-1127
Scopus Author ID: 54882274000
ResearcherId: C-8333-2015

доктор биологических наук, доцент, заведующая лабораторией молекулярной иммунологии 

Россия, 614081, Россия, Пермь, ул. Голева, 13

Список литературы

  1. Марченко Д.М., Сайдакова Е.В. Новые маркеры для исследования пролиферации Т-лимфоцитов человека. Вестник Пермского университета Серия «Биология», 2021, №. 4, С.316-323.
  2. Banks H.T., Sutton K.L., Thompson W.C., Bocharov G., Roose D., Schenkel T., et al. Estimation of cell proliferation dynamics using CFSE data. Bull Math Biol., 2011, Vol. 73, No. 1, pp.116-150.
  3. Cooper S., Shayman J.A. Revisiting retinoblastoma protein phosphorylation during the mammalian cell cycle. Cell Mol Life Sci., 2001, Vol. 58, No. 4, pp.580-595.
  4. Crosio C., Fimia G.M., Loury R., Kimura M., Okano Y., Zhou H., et al. Mitotic phosphorylation of histone H3: spatio-temporal regulation by mammalian Aurora kinases. Mol Cell Biol., 2002, Vol. 22, No. 3, pp.874-885.
  5. Darzynkiewicz Z. Critical aspects in analysis of cellular DNA content. Curr Protoc Cytom., 2011, Chapter 7, pp.7 2 1-7 2 8.
  6. Kalimuddin S., Tham C.Y.L., Chan Y.F.Z., Hang S.K., Kunasegaran K., Chia A., et al. Vaccine-induced T cell responses control Orthoflavivirus challenge infection without neutralizing antibodies in humans./ Nat Microbiol., 2025, Vol. 10, No. 2, pp.374-387.
  7. Kim C., Fang F., Weyand C.M., Goronzy J.J. The life cycle of a T cell after vaccination - where does immune ageing strike? Clin Exp Immunol., 2017, Vol. 187, No. 1. pp.71-81.
  8. Motamedi M., Xu L., Elahi S. Correlation of transferrin receptor (CD71) with Ki67 expression on stimulated human and mouse T cells: The kinetics of expression of T cell activation markers. J Immunol Methods, 2016, Vol. 437, pp.43-52.
  9. Rothaeusler K., Baumgarth N. Assessment of cell proliferation by 5-bromodeoxyuridine (BrdU) labeling for multicolor flow cytometry. Curr Protoc Cytom,. 2007, Vol. Chapter 7, Unit7, pp. 31.
  10. Schmid I., Ferbas J., Uittenbogaart C.H., Giorgi J.V. Flow cytometric analysis of live cell proliferation and phenotype in populations with low viability. Cytometry, 1999, Vol. 35, No. 1, pp.64-74.
  11. Wang L., Nicols A., Turtle L., Richter A., Duncan C.J., Dunachie S.J., et al. T cell immune memory after covid-19 and vaccination. BMJ Med., 2023, Vol. 2, No. 1, pp.e000468.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Сайдакова Е.В.,

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах