CCR6+CXCR3– CD8+ Т-ЛИМФОЦИТЫ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ В ПАТОГЕНЕЗЕ РЕЦИДИВИРУЮЩЕ-РЕМИТТИРУЮЩЕГО РАССЕЯННОГО СКЛЕРОЗА
- Авторы: Лебедев В.М.1, Фролова О.М.2, Старикова Э.А.2, Маммедова Д.Т.2, Кудрявцев И.В.2
-
Учреждения:
- ФГБУН Институт мозга человека им. Н.П. Бехтеревой РАН, Санкт-Петербург, Россия
- ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины», Санкт-Петербург, Россия
- Раздел: Иммунологические чтения в Челябинске
- Дата подачи: 26.03.2025
- Дата принятия к публикации: 25.05.2025
- URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/17141
- DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-17141-PBC
- ID: 17141
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Резюме
Введение. Рассеянный склероз (РС) – это хроническое прогрессирующее нейродегенеративное аутоиммунное заболевание нервной системы, которое характеризуется появлением в головном и спинном мозге диссеминированных очагов демиелинизации, в составе которых обнаруживаются различные популяции иммунных клеток, включая CD8+ Т-лимфоциты. В настоящее время общий пул CD8+ Т-клеток принято разделять три ключевых подтипа – Tc1, Tc2 и Tc17, которые принимают участие в реализации воспалительных реакций по трем ключевым типам и различаются по своим функциональным, а также фенотипическим характеристикам. Баланс между цитолитическими Tc1, с одной стороны, и «цитокин-продуцирующими» Tc2 и Tc17, с другой, играет важную роль в развитии различных патологических состояний, включая аутоиммунные заболевания. Целью исследования был анализа субпопуляционного состав CD8+ Т-клеток периферической крови у 25 пациентов с рецидивирующе-ремиттирующим течением РС и 24 условно здоровых добровольцев, соответствующих по полу и возрасту группе РС. Материалы и методы. Для выявления основных субпопуляций CD8+ Т-клеток применяли проточную цитометрию, при помощи которой определяли относительное и абсолютное содержание Tc1 (CCR6–CXCR3+), Tc2 (CCR6–CXCR3–), Tc17 (CCR6+CXCR3–) и Tc17.1 (CCR6+CXCR3+) клеток, а также их распределение в рамках «наивных» клеток (CD45RA+CD62L+), клеток центральной (СМ) и эффекторной (ЕМ) памяти (с фенотипами CD45RA–CD62L+ и CD45RA–CD62L–, соответственно), а также эффекторных клеток популяции TEMRA (CD45RA+CD62L–). Результаты. Было показано, что при РС в периферической крови достоверно снижалось относительно содержание Тс1 клеток, а относительное и абсолютное содержание Тс17 и Тс17.1 достоверно возрастало относительно значений контрольной группы. Более того, при анализе уровня Тс17 клеток нами было отмечено достоверное увеличение их процентного содержания в рамках всех исследованных стадиях созревания CD8+ Т-лимфоцитов, циркулировавших в периферической крови пациентов с РС. Причем различия с группой контроля особенно ярко проявлялись в случае популяций CD8+ Т-лимфоцитов, способных мигрировать в воспаленные ткани – ЕМ и TEMRA (11,66% (4,75; 14,69) против 2,45% (1,48; 3,89) и 4,91% (3,68; 8,63) против 0,41% (0,11; 1,30), соответственно, при р<0,001 для обеих популяций клеток). Выводы. Полученные нами результаты указывают на важную роль Тс17 клеток в патогенезе РС, что может в дальнейшем применяться для разработки новых способов диагностики и терапии данного заболевания.
Об авторах
Валерий Михайлович Лебедев
ФГБУН Институт мозга человека им. Н.П. Бехтеревой РАН, Санкт-Петербург, Россия
Email: lebedevvaleriy@bk.ru
заведующий отделением неврологии, врач-невролог, младший научный сотрудник
Россия, 197022, Санкт-Петербург, ул. академика Павлова, 9Ольга Михайловна Фролова
ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины», Санкт-Петербург, Россия
Email: dr.novoselova@gmail.com
врач-невролог, младший научный сотрудник
Россия, 197022, Санкт-Петербург, ул. академика Павлова, 9Элеонора Александровна Старикова
ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины», Санкт-Петербург, Россия
Email: Starickova@yandex.ru
к.б.н., старший научный сотрудник
Россия, 197376, ул. Акад. Павлова, 12, Санкт-Петербург, РоссияДженнет Тумаровна Маммедова
ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины», Санкт-Петербург, Россия
Email: jennet_m@mail.ru
научный сотрудник
Россия, 197376, ул. Акад. Павлова, 12, Санкт-Петербург, РоссияИгорь Владимирович Кудрявцев
ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины», Санкт-Петербург, Россия
Автор, ответственный за переписку.
Email: igorek1981@yandex.ru
к.б.н., заведующий лабораторией
Россия, 197376, ул. Акад. Павлова, 12, Санкт-Петербург, РоссияСписок литературы
- Annunziato F., Romagnani C., Romagnani S. The 3 major types of innate and adaptive cell-mediated effector immunity. J. Allergy. Clin. Immunol., 2015, Vol. 135, no. 3, pp. 626-635. doi: 10.1016/j.jaci.2014.11.001
- Kebir H., Kreymborg K., Ifergan I., Dodelet-Devillers A., Cayrol R., Bernard M., Giuliani F., Arbour N., Becher B., Prat A. Human TH17 lymphocytes promote blood-brain barrier disruption and central nervous system inflammation. Nat. Med., 2007, Vol. 13, no. 10, pp. 1173-1175. doi: 10.1038/nm1651
- Kudryavtsev I., Benevolenskaya S., Serebriakova M., Grigor'yeva I., Kuvardin E., Rubinstein A., Golovkin A., Kalinina O., Zaikova E., Lapin S., Maslyanskiy A. Circulating CD8+ T cell subsets in primary Sjögren's syndrome. Biomedicines, 2023, Vol. 11, no. 10, pp. 2778 doi: 10.3390/biomedicines11102778
- Kudryavtsev I.V., Arsentieva N.A., Korobova Z.R., Isakov D.V., Rubinstein A.A., Batsunov O.K., Khamitova I.V., Kuznetsova R.N., Savin T.V., Akisheva T.V., Stanevich O.V., Lebedeva A.A., Vorobyov E.A., Vorobyova S.V., Kulikov A.N., Sharapova M.A., Pevtsov D.E., Totolian A.A. Heterogenous CD8+ T cell maturation and 'polarization' in acute and convalescent COVID-19 patients. Viruses, 2022, Vol. 14, no. 9, pp. 1906. doi: 10.3390/v14091906
- Lolli F., Martini H., Citro A., Franceschini D., Portaccio E., Amato M.P., Mechelli R., Annibali V., Sidney J., Sette A., Salvetti M., Barnaba V. Increased CD8+ T cell responses to apoptotic T cell-associated antigens in multiple sclerosis. J Neuroinf., 2013, Vol. 10, pp. 94. doi: 10.1186/1742-2094-10-94
- Loyal, L., Warth, S., Jürchott, K. et al. SLAMF7 and IL-6R define distinct cytotoxic versus helper memory CD8+ T cells. Nat. Commun., 2020, Vol. 11, pp. 6357 https://doi.org/10.1038/s41467-020-19002-6
- Lückel C., Picard F., Raifer H., Campos Carrascosa L., Guralnik A., Zhang Y., Klein M., Bittner S., Steffen F., Moos S., Marini F., Gloury R., Kurschus F.C., Chao Y.Y., Bertrams W., Sexl V., Schmeck B., Bonetti L., Grusdat M., Lohoff M., Zielinski C.E., Zipp F., Kallies A., Brenner D., Berger M., Bopp T., Tackenberg B., Huber M. IL-17+ CD8+ T cell suppression by dimethyl fumarate associates with clinical response in multiple sclerosis. Nat Commun., 2019, Vol. 10, no. 1, pp. 5722. doi: 10.1038/s41467-019-13731-z
- Mittrücker H.W., Visekruna A., Huber M. Heterogeneity in the differentiation and function of CD8+ T cells. Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz), 2014, Vol. 62, no. 6, pp. 449-458. doi: 10.1007/s00005-014-0293-y
- Nicol B., Salou M., Vogel I., Garcia A., Dugast E., Morille J., Kilens S., Charpentier E., Donnart A., Nedellec S., Jacq-Foucher M., Le Frère F., Wiertlewski S., Bourreille A., Brouard S., Michel L., David L., Gourraud P.A., Degauque N., Nicot A.B., Berthelot L., Laplaud D.A. An intermediate level of CD161 expression defines a novel activated, inflammatory, and pathogenic subset of CD8+ T cells involved in multiple sclerosis. J Autoimmun., 2018, Vol. 88, pp. 61-74. doi: 10.1016/j.jaut.2017.10.005
- Reich D.S., Lucchinetti C.F., Calabresi P.A. Multiple Sclerosis. N. Engl. J. Med., 2018, Vol. 378, no. 2, pp. 169-180. doi: 10.1056/NEJMra1401483
- Rubinstein A., Kudryavtsev I., Arsentieva N., Korobova Z.R., Isakov D., Totolian A.A. CXCR3-Expressing T Cells in Infections and Autoimmunity. Front. Biosci. (Landmark Ed), 2024, Vol. 29, no. 8, pp. 301. doi: 10.31083/j.fbl2908301
- Salehi Z., Doosti R., Beheshti M., Janzamin E., Sahraian M.A., Izad M. Differential frequency of CD8+ T cell subsets in multiple sclerosis patients with various clinical patterns. PLoS ONE, 2016, Vol. 11, no. 7, pp. e0159565 https://doi.org/10.1371/journal.pone.0159565
- Stojić-Vukanić Z., Hadžibegović S., Nicole O., Nacka-Aleksić M., Leštarević S., Leposavić G. CD8+ T cell-mediated mechanisms contribute to the progression of neurocognitive impairment in both multiple sclerosis and Alzheimer's disease? Front Immunol., 2020, Vol. 11, pp. 566225. doi: 10.3389/fimmu.2020.566225
- Wang H.H., Dai Y.Q., Qiu W., Lu Z.Q., Peng F.H., Wang Y.G., Bao J., Li Y., Hu X.Q. Interleukin-17-secreting T cells in neuromyelitis optica and multiple sclerosis during relapse. J Clin Neurosci., 2011, Vol. 18, pp. 1313-1317 doi: 10.1016/j.jocn.2011.01.031
Дополнительные файлы
