ФАГОЦИТАРНАЯ И ЦИТОКИН-ПРОДУЦИРУЮЩАЯ АКТИВНОСТЬ ЛЕЙКОЦИТОВ КРОВИ МЫШЕЙ ЛИНИИ BALB/C, ПРИВИТЫХ ПРОТИВ ЧУМЫ НА ФОНЕ ИММУНОМОДУЛЯЦИИ ПОЛИОКСИДОНИЕМ



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Полиоксидоний повышает иммуногенность и протективность живой чумной вакцины, но клеточные механизмы, лежащие в основе его иммуномодулирующего эффекта, недостаточно изучены. В настоящей работе с помощью проточной цитометрии исследовали фагоцитарную активность (ФА) гранулоцитов крови привитых и не привитых против чумы мышей BALB/c по отношению к Yersinia pestis, Escherichia coli и Staphylococcus aureus. Результаты фагоцитарной реакции учитывали в микрообъёмах цельной крови на 3, 7 и 21 сутки иммуногенеза. Спонтанную и Кон-А-индуцированную продукцию цитокинов (IFN-γ и IL-10) оценивали в крови иммуноферментным методом. В одной из групп животных противочумную вакцинацию проводили на фоне иммуномодуляции препаратом полиоксидонием. Установлено, что у интактных мышей ФА гранулоцитов крови в отношении клеток Y. pestis вдвое ниже, чем в опытах с клетками E. coli и S. aureus. Противочумная вакцинация специфически активировала in vitro поглотительную способность фагоцитов крови только по отношению к чумным микробам. На фоне иммуномодулирующего эффекта полиоксидония, ФА повышалась в опытах с клетками Y. pestis уже на 3 сутки иммуногенеза, что согласуется с известной способностью данного иммуномодулятора стимулировать более ранний антителогенез при противочумной вакцинации. Кроме того, повышение значений фагоцитарных индексов коррелировало с усилением спонтанной и индуцированной продукции цитокинов в образцах крови привитых против чумы животных. Полученные данные отражают зависимость ФА лейкоцитов крови от вида возбудителя, специфических антител и цитокинов. Они свидетельствуют, что способность полиоксидония повышать протективность живой чумной вакцины может быть связана с активацией ФА лейкоцитов по отношению к клеткам чумного микроба.

Об авторах

С. Н. Клюева

ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Автор, ответственный за переписку.
Email: klyueva.cvetlana@mail.ru

к. б. н., н. с. отдела иммунологии,

410005, г. Саратов, ул. Университетская, 46

Россия

А. Л. Кравцов

ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Email: fake@neicon.ru

д. м. н., в. н. с. отдела иммунологии,

Саратов

Россия

С. А. Бугоркова

ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Email: fake@neicon.ru

д. м. н., заведующая отделом иммунологии,

Саратов

Россия

Т. Н. Щуковская

ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Email: fake@neicon.ru

д. м. н., профессор, главный научный сотрудник отдела иммунологии,

Саратов

Россия

В. А. Кожевников

ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Email: fake@neicon.ru

м. н. с. отдела иммунологии,

Саратов

Россия

А. Ю. Гончарова

ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Email: fake@neicon.ru

к. м. н., н. с. отдела иммунологии,

Саратов

Россия

Список литературы

  1. Shannon J. G., Hasenkrug A. M., Dorward D. W., Nair V., Carmody A. B., Hinnebusch B. J. Yerinia pestis subverts the dermal neutrophil response in a mouse model of bubonic plague. Mbio 2013, 4, e00170- e00113.10.1128/mbio.00170-13.
  2. Кравцов А. Л., Курылина А. Ф., Клюева С. Н., Щуковская Т. Н. Модулирующий эффект полиоксидония на реактивность клеток иммунной системы при формировании противочумного иммунитета. Иммунология 2016, 37(6), 320–325.
  3. Пономарева Т. С., Дерябин П. Н., Каральник Б. В., Тугамбаев Т. И., Атшабар Б. Б., Денисова Т. Г., Закарян С. Б., Мельникова Н. Н. Влияние полиоксидония на иммуногенную и протективную активность живой чумной вакцины. Иммунология 2014, 5, 286–290.
  4. Хаитов Р. М., Пинегин Б. В. Основные задачи клинической иммунологии по изучению функциональной активности фагоцитирующих клеток. Иммунология 1995, 3, 6–10.
  5. Нестерова И. В., Колесникова Н. В., Чудилова Г. А., Ломтатидзе Л. В., Ковалева С. В., Евглевский А. А., Нгуен Т. З.Л. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. Часть 1 // Инфекция и иммунитет 2017, 7(3), 219– 230.
  6. Jansen W. T.M., Väkeväinen-Anttila M., Käyhty H., Nahm M., Bakker N., Verhoef J., Snippe H., Verheul A. F. Comparison of a classical phagocytosis assay and a flow cytometry assay for assessment of the phagocytic capacity of sera from adults vaccinated with pneumococcal conjugate vaccine. Clin. Diag. Lab. Immunology 2001, 8(2), 245–250.
  7. Ison C. A. Whole-blood model. Methods Mol Med 2001, 66, 317–329.
  8. Hasui M., Hirabayashi Y., Kobayashi Y. Simultaneous measurement by flow cytometry of phagocytosis and hydrogen peroxide production of neutrophils in whole blood. J. Immunol. Methods 1989, 117, 53–58
  9. White-Owen C., Alexander J. W., Sramkoski R. M., Babcock G. F. Rapid whole-blood microassay using flow cytometry for measuring neutrophil phagocytosis. J. Clin. Microbiology 1992, 30 (8), 2071–2076.
  10. Miliukienë V., Šiaurys A., Pilinkienë A., Chaustova L. Flow cytometry measurement of Saccharomyces cerevisiae phagocytosis by neutrophils in mouse blood. Biologiya 2005, 3, 69–73.
  11. Spinner J. L., Cundiff J. A., Kobayashi S. D. Yersinia pestis type III secretion system-dependent inhibition of human polymorphonuclear leukocyte function. Infec. Immunity 2008, 76 (8), 3754–3760.
  12. Du Y., Rosqvist R., Forsberg A. Role of fraction 1 antigen of Yersinia pestis in inhibition of phagocytosis. Infect. Immun. 2002, 70, 1453–1460.
  13. Клюева С. Н., Щуковская Т. Н. Влияние адъювантов нового поколения in vitro на продукцию цитокинов клетками крови вакцинированных против чумы лиц. Российский иммунологический журнал 2015, 9(18), 2, 201–208.
  14. Олиферук Н. С., Пинегин Б. В. Определение фагоцитарного числа лейкоцитов периферической крови по отношению к Staphylococcus aureus с помощью проточной цитометрии. Иммунология 2007, 4, 236–240.
  15. Landoni V. I., Chiarella P., Martire-Greco D., Schierloh P., van-Rooij en N., Rearte B., Palermo M. S., Isturiz M. A., Fernandez G. C. Tolerance to lipopolysaccharide promotes an enhanced neutrophil extracellular traps formation leading to a more efficient bacterial clearance in mice. Clinical and Experimental Immunology 2012, 168, 153–163.
  16. Исачкова Л. М., Плехова Н. Г. К развитию представлений об антиинфекционной резистентности. Эпидемиология и инфекционные болезни 2002, 1, 11–15.
  17. Девдариани З. Л., Терешкина Н. Е., Тараненко Т. М., Киреев М. Н., Терехова И. В., Григорьева Г. В., Исляева М. Н., Ермаков Н. М., Виноградова Н. А., Малахаева А. Н. Результаты модельных экспериментов по конструированию тест-системы иммуноферментной для выявления антител к Ф1 чумного микроба (ИФА-Ат-Ф1 Yersinia pestis). Проблемы особо опасных инфекций 2013, 1, 74–77.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Клюева С.Н., Кравцов А.Л., Бугоркова С.А., Щуковская Т.Н., Кожевников В.А., Гончарова А.Ю., 2019

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах