ВЛИЯНИЕ ПРОИЗВОДНОГО МУРАМИЛДИПЕПТИДА (ГМДП-А) НА ЛИНИИ ОПУХОЛЕВЫХ КЛЕТОК, ЭКСПРЕССИРУЮЩИХ NOD-2

Обложка
  • Авторы: Гапонов А.М.1,2, Якушенко Е.В.1, Тутельян А.В.3, Козлов И.Г.1
  • Учреждения:
    1. ФГБУ “Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Д. Рогачева” Минздрава РФ
    2. ФГБНУ “Федеральный научно-клинический центр реаниматологии и реабилитологии”, ФАНО России
    3. ФБУН Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии Роспотребнадзора
  • Выпуск: Том 21, № 2 (2018)
  • Страницы: 128-140
  • Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
  • Дата подачи: 15.04.2020
  • Дата принятия к публикации: 15.04.2020
  • Дата публикации: 15.04.2018
  • URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/66
  • ID: 66

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Мурамилдипептиды (МДП) являются многократно повторяющимся структурным элементом в составе пептидогликана клеточных стенок всех бактерий, которые сохраняют способность взаимодействовать с цитоплазматическими рецепторами семейства NOD в клетках человека и вызывать активацию врожденного иммунитета. Это делает их перспективными соединениями при разработке лекарственных препаратов для иммуномодулирующей терапии и, в частности, для биотерапии опухолей. Однако существуют данные об экспрессии целевых для МДП рецепторов NOD в опухолевых клетках, а также ассоциированности некоторых видов рака с различными полиморфными вариантами этих рецепторов. В связи с этим целью представленного исследования было изучить влияние синтетического аналога МДП – ГМДП-А на пролиферативный потенциал опухолевых клеточных линий различного происхождения, экспрессирующих NOD-2, а также эффект совместного использования ГМДП-А с циспатином. В результате проведенных исследований показано, что влияние ГМДП-А (в дозах 1, 5, 10, 20 и 40 мкг/мл) отдельно и совместно с цисплатином имеет разнонаправленный характер.

Об авторах

А. М. Гапонов

ФГБУ “Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Д. Рогачева” Минздрава РФ; ФГБНУ “Федеральный научно-клинический центр реаниматологии и реабилитологии”, ФАНО России

Email: fake@neicon.ru

к.м.н., заведующий лабораторией инфекционной иммунологии; в.н.с. лаборатории молекулярных механизмов критических состояний

г. Москва

Россия

Е. В. Якушенко

ФГБУ “Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Д. Рогачева” Минздрава РФ

Email: fake@neicon.ru

д.м.н., в.н.с. лаборатории экспериментальной и клинической фармакологии

г. Москва

Россия

А. В. Тутельян

ФБУН Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии
Роспотребнадзора

Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-2706-6689

д.м.н., профессор, член-корр. РАН, заведующий лабораторией инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи

eLibrary SPIN: 8150-2230

г. Москва

Россия

И. Г. Козлов

ФГБУ “Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Д. Рогачева” Минздрава РФ

Автор, ответственный за переписку.
Email: immunopharmacology@yandex.ru

д.м.н., профессор, заведующий лабораторией экспериментальной и клинической фармакологии

117997 г. Москва, ул. Саморы Машела, д. 1

Россия

Список литературы

  1. Corthay A. Does the immune system naturally protect against cancer? Front Immunol. 2014, 5, 197.
  2. Симбирцев А.С. Роль цитокинов в развитии опухолей и в иммунотерапии рака. В кн.: Цитокины в патогенезе и лечении заболеваний человека. Фолиант, СПб 2018, 479–509. [Simbirsev A.S. The role of cytokines in the development of tumors and in cancer immunotherapy. In: Cytokines in the pathogenesis and treatment of human diseases. Folio, St. Petersburg 2018, 479–509].
  3. Girardin S.E., Travassos L.H., Hervé M., Blanot D., Boneca I.G., Philpott D.J., Sansonetti P.J., Mengin-Lecreulx D. Peptidoglycan molecular requirements allowing detection by Nod1 and NOD-2. J Biol Chem. 2003, 278(43), 41702–8.
  4. Traub S., von Aulock S., Hartung T., Hermann C. MDP and other muropeptides-direct and synergistic effects on the immune system. J Endotoxin Res. 2006, 12 (2), 69–85.
  5. Ростовцева Л.И., Андронова Т.М., Малькова В.П. Синтез и противоопу холевое действие гликопептидов, содержащих N-ацетилглюкозаминил-(β1-4)-N-ацетилмурамил-дисахаридное звено. Биоорганическая химия 1981, 7, 12, 1843–1858. [Rostovtseva LI, Andronova TM, Malkova V.P. Synthesis and antitumor activity of glycopeptides containing N-acetylglucosaminyl (β1– 4)-N-acetylmuramyl-disaccharide unit. Bioorganic Chemistry 1981, 7, 12, 1843–1858].
  6. Сорокина И.Б., Малькова В.П., Ростовцева Л.И. Поиск противоопухолевых соединений среди природных и синтетических гликопептидов, моделирующих клеточные стенки бактерий. В кн.: Актуальные проблемы экспериментальной химиотерапии опухолей. II Всесоюзное совещание. М., 1982; 147–9. [Sorokina I.B., Malkova V.P., Rostovtseva L.I. Search for antitumor compounds among natural and synthetic glycopeptides, which model cell walls of bacteria. In the book: Actual problems of experimental chemotherapy of tumors. Second All-Union Conference. M., 1982; 147–9].
  7. Shimizu Т., Iwamoto Y., Yanagihara Y., Ikeda K., Achiwa K. Combined effects of synthetic lipid A analogs or bacterial lypopolysaccharide with glucosaminylmuramyldipeptide on antitumor activity against meth A fibrosarcoma in mice. Int J Immunopharmacol. 1992, 14(8), 1415–20.
  8. Симонова М.А. Влияние ГМДП на биологическую активность цисплатина и фактора некроза опухолей-альфа. Автореф. дисс. Москва 2008. [Simonova M.A. The influence of GMDP on the biological activity of cisplatin and tumor necrosis factor-alpha. Author's abstract. diss. Moscow 2008].
  9. Ахматова Н.К. Молекулярные и клеточные механизмы действия иммуномодуляторов микробного происхождения на функциональную активность эффекторов врожденного иммунитета. Автореф. дисс. Москва 2006. [Akhmatova N.K. Molecular and cellular mechanisms of action of immunomodulators of microbial origin on the functional activity of the effectors of innate immunity. Author's abstract. diss. Moscow 2006].
  10. Ахматова Н.К., Кислевский М.В. В кн.: Врожденный иммунитет: противоопухолевый и противоинфекционный. Практическая медицина, Москва 2008. [Akhmatova N.K., Kislevsky M.V. In the book: Congenital immunity: antitumor and antiinfective. Practical medicine, Moscow 2008].
  11. Уманский В.Ю., Стефанов А.В., Бондарь О.П. Эффект ГМДП, заключенного в липосомы, на метастазирование карциномы легкого Льюис. Экспериментальная онкология 1988, Т. 10, № 5, 40–3. [Umansky V. Yu., Stefanov A.V., Bondar O.P. The effect of GMDP, encapsulated in liposomes, on the metastasis of Lewis lung carcinoma. Experimental oncology 1988, T. 10, No. 5, 40–3].
  12. Ревазова Е.С. Мурамилдипептиды модулируют экспрессию опухолеассоциированных антигенов. Иммунология 1989, Т. 4, 32– 6. [Revazova E.S. Muramyl dipeptides modulate the expression of tumor-associated antigens. Immunology 1989, Vol. 4, 32–6].
  13. Valyakina Т.I., Malakhov A., Malakhova N., Petrova E., Bykovskaya S., Revazova E., Nesmeyanov V. Glucosaminylmuramyldipeptide induced changes in phenotype of melanoma cells result in their increased lysis by peripheral blood cells. Int J Oncol. 1996, 9, 885–91.
  14. Petrova E.E., Simonova M.A., Komaleva R.L., Britsina M.V., Andronova T.M., Nesmeyanov V.A., Valyakina T.I. GMDP augments antitumor action of the CP/TNFalpha combination in vivo. Biomed Pharmacother. 2010, 64 (4), 240–8.
  15. Werts C., Rubino S., Ling A., Girardin S.E., Philpott D.J.J. Nod-like receptors in intestinal homeostasis, inflammation, and cancer. Leukoc Biol. 2011, 90 (3), 471–82.
  16. Velloso F.J., Sogayar M.C., Correa R.G. Expression and in vitro assessment of tumorigenicity for NOD1 and NOD-2 receptors in breast cancer cell lines. BMC Res Notes. 2018, 3, 11(1), 222.
  17. Papaconstantinou I., Theodoropoulos G., Gazouli M., Panoussopoulos D., Mantzaris G.J., Felekouras E., Bramis J. Association between mutations in the CARD15/NOD-2 gene and colorectal cancer in a Greek population. Int J Cancer. 2005, 10, 114(3), 433–5.
  18. Dzierzbicka K., Trzonkowski P., Sewerynek P., Kolodziejczyk A.M., Myśliwski A. Synthesis and biological activity of tuftsin, its analogue and conjugates containing muramyl dipeptides or normuramyl dipeptides. J Pept Sci. 2005, 11(3), 123–35.
  19. Klimp A.H., de Vries E.G., Scherphof G.L., Daemen T. A potential role of macrophage activation in the treatment of cancer. Crit Rev Oncol Hematol. 2002, 44(2), 143–61.
  20. Ekman A.K., Cardell L.O. The expression and function of Nod-like receptors in neutrophils. Immunology 2010, 130(1), 55–63.
  21. van der Meer J.H., Netea M.G., Dinarello C.A. Modulation of muramyl dipeptide stimulation of cytokine production by blood components. Clin Exp Immunol. 2009, 156(3), 428–33.
  22. Barnich N., Aguirre J.E., Reinecker H.C., Xavier R., Podolsky D.K. Membrane recruitment of NOD-2 in intestinal epithelial cells is essential for nuclear factor{kappa}B activation in muramyl dipeptide recognition. J Cell Biol. 2005, 4; 170(1), 21–6.
  23. Ogura Y., Lala S., Xin W., Smith E., Dowds T.A., Chen F.F., Zimmermann E., Tretiakova M., Cho J.H., Hart J., Greenson J.K., Keshav S., Nuñez G. Expression of NOD-2 in Paneth cells: a possible link to Crohn’s ileitis. Gut. 2003, 52(11), 1591–7.
  24. Lubiński J., Huzarski T., Kurzawski G., Suchy J., Masojć B., Mierzejewski M., Lener M., Domagała W., Chosia M., Teodorczyk U., Medrek K., Debniak T., Złowocka E., Gronwald J., Byrski T., Grabowska E., Nej K., Szymańska A., Szymańska J., Matyjasik J., Cybulski C., Jakubowska A., Górski B., Narod S.A. The 3020insC Allele of NOD-2 Predisposes to Cancers of Multiple Organs. Hered Cancer Clin Pract. 2005, 15, 3(2), 59–63.
  25. Cruickshank S.M., Wakenshaw L., Cardone J., Howdle P.D., Murray P.J., Carding S.R. Evidence for the involvement of NOD-2 in regulating colonic epithelial cell growth and survival. World J Gastroenterol. 2008, 14, 14(38), 5834–41.
  26. Ogura Y., Bonen D.K., Inohara N., Nicolae D.L., Chen F.F., Ramos R., Britton H., Moran T., Karaliuskas R., Duerr R.H., Achkar J.P., Brant S.R., Bayless T.M., Kirschner B.S., Hanauer S.B., Nuñez G., Cho J.H. A frameshift mutation in NOD-2 associated with susceptibility to Crohn’s disease. Nature 2001, 31; 411 (6837), 603–6.
  27. Ogura Y., Inohara N., Benito A., Chen F.F., Yamaoka S., Nunez G. NOD-2, a Nod1/Apaf-1 family member that is restricted to monocytes and activates NF-kappaB. J Biol Chem. 2001, 16, 276(7), 4812–8.
  28. Hugot J.P., Chamaillard M., Zouali H., Lesage S., Cézard J.P., Belaiche J., Almer S., Tysk C., O’Morain C.A., Gassull M., Binder V., Finkel Y., Cortot A., Modigliani R., Laurent-Puig P., Gower-Rousseau C., Macry J., Colombel J.F., Sahbatou M., Thomas G. Association of NOD-2 leucine-rich repeat variants with susceptibility to Crohn’s disease.Nature. 2001, 31; 411(6837), 599–603.
  29. Hampe J., Cuthbert A., Croucher P.J., Mirza M.M., Mascheretti S., Fisher S., Frenzel H., King K., Hasselmeyer A., MacPherson A.J., Bridger S., van Deventer S., Forbes A., Nikolaus S., Lennard-Jones J.E., Foelsch U.R., Krawczak M., Lewis C., Schreiber S., Mathew C.G. Association between insertion mutation in NOD-2 gene and Crohn’s disease in German and British populations. Lancet 2001, 16, 357(9272), 1925–8.
  30. Companioni O., Bonet C., Muñoz X., Weiderpass E., Panico S., Tumino R., Palli D., Agnoli C., Vineis P., Boutron-Ruault M.C., Racine A., Clavel-Chapelon F., Travis R.C., Khaw K.T., Riboli E., Murphy N., Vergnaud A.C., Trichopoulou A., Benetou V., Trichopoulos D., Lund E., Johansen D., Lindkvist B., Johansson M., Sund M., Ardanaz E., Sánchez-Cantalejo E., Huerta J.M., Dorronsoro M., Ramón Quirós J., Tjonneland A., Mortensen L.M., Overvad K., Chang-Claude J., Rizzato C., Boeing H., Bueno-de-Mesquita H.B., Siersema P., Peeters P.H., Numans M.E., Carneiro F., Licaj I., Freisling H., Sala N., González C.A. Polymorphisms of Helicobacter pylori signaling pathway genes and gastric cancer risk in the European Prospective Investigation into Cancer-Eurgast cohort. Int J Cancer. 2014, 1, 134(1), 92–101.
  31. Rosenstiel P., Hellmig S., Hampe J., Ott S., Till A., Fischbach W., Sahly H., Lucius R., Fölsch U.R., Philpott D., Schreiber S. Influence of polymorphisms in the NOD1/CARD4 and NOD-2/CARD15 genes on the clinical outcome of Helicobacter pylori infection. Cell Microbiol. 2006, 8(7), 1188–98.
  32. Philpott D.J., Sorbara M., Robertson S.J., Croitoru K., Girardin S.E. NOD proteins: regulators of inflammation in health and disease. Nat Rev Immunol. 2014, 14(1), 9–23.
  33. Penack O., Holler E., van den Brink M.R. Graft-versus-host disease: regulation by microbe-associated molecules and innate immune receptors. Blood 2010, 11, 115(10), 1865–72.
  34. Bonen D.K., Ogura Y., Nicolae D.L., Inohara N., Saab L., Tanabe T., Chen F.F., Foster S.J., Duerr R.H., Brant S.R., Cho J.H., Nuñez G. Crohn’s disease-associated NOD-2 variants share a signaling defect in response to lipopolysaccharide and peptidoglycan. Gastroenterology 2003, 124(1), 140–6.
  35. Немцова Е.Р., Безбородова О.А., Морозова Н.Б., Воронцова М.С., Венедиктова Ю.Б., Андреева Т.Н., Нестерова Е.И., Андронова Т.М., Якубовская Р.И. Эффективность сочетанного лечения экспериментальных опухолей цитостатическими препаратами и ГМДП-А. Российский биотерапевтический журнал 2017, 16, 2, 13–22. [Nemtsova E.R., Bezborodova O.A., Morozova N.B., Vorontsova M.S., Venediktova Yu.B., Andreeva T.N., Nesterova E.I., Andronova T.M., Yakubovskaya R.I. Efficiency of combined treatment of experimental tumors with cytostatic drugs and GMDP-A. Russian Biotherapeutic Journal 2017, 16, 2, 13–22].
  36. Wen X., Zheng P., Ma Y., Ou Y., Huang W., Li S., Liu S., Zhang X., Wang Z., Zhang Q., Cheng W., Lin R., Li H., Cai Y., Hu C., Wu N., Wan L., Pan T., Rao J., Bei X., Wu W., Jin J., Yan J., Liu G. Salutaxel, a conjugate of docetaxel and a muramyl dipeptide (MDP) analogue, acts as multifunctional prodrug that inhibits tumor growth and metastasis. J Med Chem. 2018, 22, 61(4), 1519–1540.
  37. Trescec A., Iskrić S., Ljevaković D., Hrsak I., Tomasić J. The effects of immunomodulating peptidoglycan monomer and muramyl dipeptide on hepatic microsomal UDP-glucuronyltransferase and beta-glucuronidase. Int J Immunopharmacol. 1987, 9(3), 371–8.
  38. Montero A.J., Diaz-Montero C.M., Kyriakopoulos C.E., Bronte V., Mandruzzato S. Myeloid-derived suppressor cells in cancer patients: a clinical perspective. J Immunother. 2012, 35 (2), 107–15.
  39. Gabrilovich D.I., Nagaraj S. Myeloid-derived suppressor cells as regulators of the immune system. Nat Rev Immunol. 2009, 9(3), 162–74.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Гапонов А.М., Якушенко Е.В., Тутельян А.В., Козлов И.Г., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах