Особенности Т-клеточного звена иммунитета у больных с острым коронарным синдромом, болевших и не болевших COVID-19, в зависимости от содержания натуральных киллеров
- Авторы: Сафронова Э.А.1, Рябова Л.В.1
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ
- Выпуск: Том 26, № 3 (2023)
- Страницы: 389-396
- Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- Дата подачи: 14.05.2023
- Дата принятия к публикации: 29.06.2023
- Дата публикации: 11.08.2023
- URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/9640
- DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-9640-FOT
- ID: 9640
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обследовано 65 мужчин с нестабильной стенокардией и острым инфарктом миокарда (острым коронарным синдромом - ОКС) от 40 до 65 лет, которые ранее болели COVID-19 и 20 лиц с ОКС, не перенесших COVID-19. У всех лиц также была гипертоническая болезнь, и им потребовалось стентирование коронарных артерий в ближайшие 3 суток после поступления в стационар. Из иммунологических показателей методом проточной цитометрии на цитофлюориметре «Navios» (BeckmanCoulter, США) по стандартизованной технологии оценки лимфоцитарного звена иммунитета [1] определялись: CD45+CD3+CD19- (Т-лимфоциты общие), CD45+CD3+CD4+ (Т-хелперы), CD45+ CD3+ CD8+ (цитотоксические Т-лимфоциты), CD45+CD3-CD19+ (В-лимфоциты), CD45+CD3+CD16+CD56+ (TNK-клетки), CD45+CD3-CD16+CD56+ (натуральные киллеры), CD45+CD3+CD4+CD25+CD127- (Т-регуляторные клетки), CD45+ CD3+CD4+CD25+ (Т-лимфоциты - ранняя активация), CD45+CD3+HLA-DR (Т-лимфоциты - поздняя активация). Все пациенты были поделены на группы в зависимости от содержания NK-клеток (натуральных киллеров). Больные, перенесшие COVID-19, имеют 3 фенотипа нарушений (пониженное количество NK-клеток нормальное и повышенное), а не перенесшие - 2 фенотипа (пониженное количество NK- клеток и нормальное). Наиболее тяжелое состояние и степень выраженности иммунных нарушений были выявлены у пациентов, перенесших COVID-19. У лиц с острым коронарным синдромом и COVID-19 преимущественно с нормальным и повышенным уровнем NK-клеток в сопоставлении с пациентами ОКС без COVID-19, наблюдалось более тяжелое течение заболевания – превалировали больные с острым инфарктом миокарда, у них выявлен более высокий уровень смертности, увеличена продолжительность лечения, а также чаще отмечались тромбозы стентов. У лиц с ОКС и COVID-19 с повышенными NK-клетками наблюдалось максимальное снижение Т-клеточного звена иммунитета: Т-лимфоцитов общих, Т-лимфоцитов-хелперов, Т-цитотоксических лимфоцитов, Т-лимфоцитов ранней активации, Т-регуляторных клеток в абсолютных числах по сравнению с другими группами. Наименьший иммунорегуляторный индекс и, при этом, максимальное число Т-NK-лимфоцитов отмечались у лиц, перенесших COVID-19 и имевших пониженные NK-клетки. Минимальное количество Т-NK-лимфоцитов регистрировалось у больных с низкими NK-клетками, не болевших COVID-19. Минимальные Т-лимфоциты (CD45+CD3+CD4+HLA-DR+) поздней активации выявлены у лиц, переболевших COVID-19, с повышенными и нормальными NK-клетками. Наименьшее число Т-регуляторных клеток поздней активации отмечалось у пациентов, не болевших COVID-19, но вакцинированных, и имеющих нормальное содержание NK-клеток. Проведенное исследование также позволяет более четко определить группы пациентов с ОКС, нуждающихся в дополнительной иммуннокоррекции.
Полный текст
Введение
Воспаление в миокарде при COVID-19 может привести к миокардиту, острому коронарному синдрому (ОКС), быстрому ухудшению состояния и внезапной смерти [7]. Прямое повреждение миокарда и цитокиновый шторм, приводящий к дестабилизации ранее существовавших и ускоренному образованию новых бляшек, являются механизмами, провоцирующими ОКС при COVID-19 [10].
В работе Хусаиновой Л.Н. и соавт. [4] показано, что у пациентов с ОКС снижено число Т-лимфоцитов, увеличено количество лимфоцитов, влияющих на апоптоз. По данным Лебедевой О.К. и соавт. [2] развитие острой сердечной недостаточности у пациентов с острым инфарктом миокарда (ОИМ) ассоциировано со снижением числа Т- и NК-клеток (натуральных киллеров).
В доступной литературе недостаточно данных о Т- и NK-клеточном иммунитете у пациентов с ОКС, перенесшим COVID-19, что определяет актуальность проводимого исследования.
Целью исследования явилось исследование Т-клеточного звена иммунитета в зависимости от числа натуральных киллеров у больных с острым коронарным синдромом, перенесших COVID-19 в сопоставлении с данными параметрами у больных без перенесенного COVID-19.
Задачи исследования:
- Выявить клинические отличия в течении заболевания у пациентов с ОКС, перенесших COVID-19 и не болевших им в зависимости от числа NK-клеток.
- Определить показатели Т-клеточного иммунного статуса у больных с ОКС, имевших в анамнезе COVID-19 и не болевших новой коронавирусной инфекций, в зависимости от показателей NK-клеточного иммунитета.
- Выявить различия в содержании основных популяций Т-лимфоцитов в вышеназванных категориях пациентов.
Материалы и методы
Обследовано 65 мужчин с нестабильной стенокардией и острым инфарктом миокарда (острым коронарным синдромом) от 40 до 65 лет, которые ранее болели COVID-19 и 20 лиц с ОКС, не перенесших COVID-19. У всех лиц также была гипертоническая болезнь, и им потребовалось стентирование коронарных артерий в ближайшие 3 суток после поступления в стационар. Коронароангиографию проводили на аппарате Innova JE, имплантировались стенты с лекарственным покрытием фирмы Xience Alpine. Все больные подписывали информированное согласие (протокол Этического комитета ЮУГМУ Минздрава России № 9 от 11.09.2006 и протокол этического комитета ГАУЗ ОТКЗ ГКБ № 1 г. Челябинска № 12 от 10.10.2022).
Из иммунологических показателей методом проточной цитометрии на цитофлюориметре Navios (Beckman Coulter, США) по стандартизованной технологии оценки лимфоцитарного звена иммунитета [1] определялись: CD45+CD3+CD19- (Т-лимфоциты общие), CD45+CD3+CD4+ (Т-хелперы), CD45+CD3+CD8+ (цитотоксические Т-лимфоциты), CD45+CD3-CD19+(В-лим- фоциты), CD45+CD3+CD16+CD56+ (TNK-клетки), CD45+CD3-CD16+CD56+ (натуральные киллеры), CD45+CD3+CD4+CD25+CD127- (Т-ре-гуляторные клетки), CD45+CD3+CD4+CD25+ (Т-лимфоциты – ранняя активация), CD45+CD3+HLA-DR (Т-лимфоциты – поздняя активация).
С помощью программы StatPlus 2009 Professional проводилась статистическая обработка материала. Высчитывали: среднюю арифметическую (М), ошибку средней арифметической (m), определяли критерий Стьюдента для независимых выборок.
Результаты и обсуждение
Все пациенты (отдельно перенесшие COVID-19 и не болевшие им, но вакцинированные от новой коронавирусной инфекции) были разбиты на 3 группы в зависимости от числа NK-клеток: со сниженными показателями NK-клеток, нормальными и повышенными [1]. Общая клиническая характеристика этих лиц проиллюстрирована в таблице 1.
ТАБЛИЦА 1. Общая характеристика больных с острым коронарным синдромом, перенесших covid-19 и не болевших им в зависимости от содержания NK-клеток
TABLE 1. general characteristics of patients with acute coronary syndrome who had covid-19 and did not have it, depending on the content of NK cells
Показатель Index | Болевшие COVID-19 Sick with COVID-19 | Не болевшие COVID-19 Not sick with COVID-19 | |||
1 NK-клетки понижены NK cells are reduced (n = 15) M±m, р | 2 NK-клетки нормальные NK cells are normal (n = 31) M±m, р | 3 NK-клетки повышены NK cells are raised (n = 19) M±m, р | 4 NK-клетки понижены NK cells are reduced (n = 9) M±m, р | 5 NK-клетки нормальные NK cells are normal (n = 11) M±m | |
Возраст, годы Age, years | 57,33 ± 1,59 | 56,19 ± 1,13 | 56,63 ± 1,60 | 54,78 ± 2,53 | 54,06 ± 2,06 |
Нестабильная стенокардия, абсолютное число больных, % Unstable angina, absolute number of patients, % | 6 (40%) | 14 (45,16%) | 7 (36,84%) | 5 (55,56%) | 9 (81,82%) |
ОИМ с пST, абсолютное число больных и % STEMI, absolute number of patients and % | 5 (33,33%) | 12 (38,71%) | 6 (31,58%) | 3 (33,33%) | 1 (9,09%) |
ОИМ бпST, абсолютное число больных, % NSTEMI, absolute number of patients, % | 4 (26,67%) | 5 (16,13%) | 6 (31,58%) | 1 (11,11%) | 1 (9,09%) |
ОИМ в прошлом, 3 (33,33%) абсолютное число больных, % AMI in the past, absolute number of patients, % | 3 (21,43%) | 7 (22,58%) | 6 (31,58%) | 3 (33,33%) | 1 (9,09%) |
Риск по Грейс, баллы Grace risk, points | 112,55 ± 12,43 | 119,58 ± 9,77 | 122,75 ± 7,74 p3-5 = 0,049 | 113,67 ± 11,90 | 101,70 ± 9,74 |
Продолжительность госпитализации, сутки Duration of hospitalization, days | 10,93 ± 0,89 p1-5 = 0,023 | 9,77 ± 0,43 p2-5 = 0,003 | 10,16 ± 0,61 | 9,44 ± 0,89 | 8,54 ± 0,49 |
Триглицериды, ммоль/л Triglycerides, mmol/L | 2,29 ± 0,27 p1-4 = 0,049 | 1,84 ± 0,27 | 1,80 ± 0,27 | 1,58 ± 0,26 | 1,57 ± 0,22 |
Тропонин I, нг/мл Troponin I, ng/mL | 8,99 ± 2,82 p1-5 = 0,028 | 9,23 ± 1,96 p2-5 = 0,019 | 9,97 ± 2,68 | 6,22 ± 3,44 | 1,85 ± 1,60 |
IgM к COVID-19, коэффициент позитивности IgM to COVID-19, positivity coefficient | 8,21 ± 1,71 p1-4 = 0,003 | 7,82 ± 1,30 p2,3 = 0,033 p2-4 = 0,005 p2-5 = 0,010 | 11,90 ± 1,79 p3, 4 = 0,0002 p3-5 = 0,0003 | 1,21 ± 0,44 | 2,46 ± 0,72 |
IgG к COVID-19, коэффициент позитивности (кп) IgG to COVID-19, positivity coefficient (pc) | 20,89 ± 1,30 p1-4 = 0,001 | 18,12 ± 1,47 p2-4 = 0,052 | 20,88 ± 1,44 p3, 4 = 0,0002 p3-5 = 0,0011 | 9,95 ± 2,55 | 13,43 ± 3,26 |
Примечание. ОИМ – острый инфаркт миокарда, ОИМ с пST – острый инфаркт миокарда с подъемом сегмента ST, ОИМ бпST – острый инфаркт миокарда без подъема сегмента ST.
Note. AMI, acute myocardial infarction; STEMI, acute myocardial infarction with ST segment elevation; NSTEMI, acute myocardial infarction without ST segment elevation.
Согласно таблице 1, у больных ОКС без COVID-19, превалировали больные с нестабильной стенокардией, а в группе перенесших COVID-19 преобладали пациенты с ОИМ, в основном с ОИМ с пST – в группе с нормальными NK-клетками. По количеству установленных стентов лидировали пациенты с нормальным и повышенным количеством NK-клеток, переболевшие COVID-19. Тромбозы стентов регистрировались у переболевших COVID-19: 3 (9,68%) лиц, имевших нормальные NK-клетки, и 1 (6,67%) с пониженными NK-клетками. В этих же группах больных чаще отмечались летальные исходы: 2 (10,53%) с повышенными NK-клетками, 3 (9,67%) с нормальными NK-клетками и 1 (6,67%) с пониженными NK-клетками. Ни одного смертельного исхода не было у лиц, не имевших в анамнезе новую коронавирусную инфекцию. Для купирования загрудинных болей использовали морфин на этапе cкорой медицинской помощи более, чем у 30% пациентов с ОКС, имевших COVID-19 в анамнезе, а у лиц с ОКС без COVID-19 с нормальными NK-клетками – только у 10%. Наблюдалось статистически значимое отличие IgM и IgG у лиц с COVID-19 в сопоставлении с больными ОКС без такового, но вакцинированных. Максимальные цифры IgМ наблюдались у лиц, болевших COVID-19, с повышенными NK-клетками.
Длительность нахождения в стационаре выше у лиц с COVID-19 и ОКС (p < 0,05). Кроме того, у них наблюдались более высокие цифры тропонина I крови (в большей степени с повышенными и нормальными NK-клетками), коэффициента атерогенности и риска по Грейс (с повышенными NK-клетками) в сравнении с этими параметрами у пациентов без COVID-19. Следует отметить, что в группе больных без COVID-19 в анамнезе, ни у одного пациента не было повышенных NK-клеток.
ТАБЛИЦА 2. Сравнение показателей показателей т-клеточного иммунитета лиц с острым коронарным синдромом, болевших и не болевших COVID-19 В ЗАВИСИМОСТИ от числа NK-клеток
TABLE 2. Comparison of indicators of t cell immunity in persons with acute coronary syndrome, sick and not sick with COVID-19, depending on the number of NK cells
Показатель Index NK-клетки NK cells | Болевшие COVID-19 Sick with COVID-19 | Не болевшие COVID-19 Not sick with COVID-19 | |||
1 NK-клетки понижены NK cells are reduced (n = 15) M ± m, р | 2 NK-клетки нормальные NK cells are normal (n = 31) M ± m, р | 3 NK-клетки повышены NK cells are raised (n = 19) M ± m, р | 4 NK-клетки понижены NK cells are reduced (n = 9) M ± m, р | 5 NK-клетки нормальные NK cells are normal (n = 11) M ± m | |
T-лимфоциты (CD45+CD3+CD19-), % T lymphocytes (CD45+CD3+CD19-), % | 66,81 ± 2,11 p1, 2 = 0,006 р1-3 = 0,008 р1-4 = 0,040 р1-5 = 0,026 | 73,29 ± 1,43 | 74,97 ± 2,42 | 73,24 ± 2,52 | 73,82 ± 2,52 |
T-лимфоциты (CD45+CD3+ CD19-), 106 кл/л T lymphocytes (CD45+CD3+CD19-), 106 cells/L | 1866,21 ± 157,84 p1-3 = 0,001 р1-4 = 0,01 | 1637,97 ± 129,72 р2-4 = 0,049 | 945,47 ± 117,68 р3-5 = 0,001 | 1215,44 ± 179,24 р4, 5 = 0,004 | 1931,00 ± 163,76 |
T-хелперы (CD45+CD3+ CD4+), % T helpers (CD45+CD3+ CD4+), % | 40,22 ± 2,13 p1, 2 = 0,0019 р1-3 = 0,001 р1-4 = 0,006 р1-5 = 0,003 | 48,79 ± 1,76 | 50,83 ± 2,31 | 50,09 ± 2,78 | 50,26 ± 2,13 |
T-хелперы (CD45+CD3+CD4+), 106 кл/л T helpers (CD45+CD3+ CD4+), 106 cells/L | 1116,05 ± 102,77 p1-3 = 0,001 р1-4 = 0,049 | 1067,29 ± 87,66 р2, 3 = 0,0014 р2-5 = 0,049 | 631,27 ± 80,25 р3-5 = 0,001 | 838,56 ± 127,59 р4, 5 = 0,007 | 1324,20 ± 125,73 |
T-цитотоксические (CD45+CD3+CD8+), 106 кл/л T cytotoxic (CD45+CD3+CD8+), 106 cells/L | 674,95 ± 76,27 p1, 2 = 0,020 р1-3 = 0,001 р1-4 = 0,005 | 504,77 ± 42,93 | 334,87 ± 65,85 | 347,44 ± 60,84 | 549,20 ± 48,07 |
Иммунорегуляторный индекс (Tx/Tc) Immunoregulatory index (Tx/Tc) | 1,95 ± 0,26 р1-3 = 0,049 | 2,42 ± 0,23 | 2,75 ± 0,43 | 2,66 ± 0,43 | 2,60 ± 0,39 |
T-NK-лимфоциты (CD45+CD3+CD16+ CD56+), % T-NK lymphocytes (CD45+CD3+CD 16+ CD 56+), % | 8,42 ± 1,29 р1-4 = 0,019 | 6,77 ± 0,93 | 6,00 ± 1,16 | 4,00 ± 1,01 р4, 5 = 0,092 | 6,30 ± 1,29 |
T-NK-лимфоциты (CD45+CD3+CD 16+CD56+), 106 кл/л T-NK lymphocytes (CD45+CD3+CD16+ CD 56+), 106 cells/L | 242,24 ± 56,86 р1, 2 = 0,044 р1-3 = 0,009 р1-4 = 0,021 | 145,13 ± 26,48 р2, 3 = 0,049 р2-4 = 0,049 | 78,00 ± 17,92 р3-5 = 0,018 | 62,22 ± 16,11 р4, 5 = 0,017 | 164,400 ± 39,708 |
T-лимфоциты CD45+CD3+CD4+CD25+ (ранняя активация), % T lymphocytes CD45+CD3+CD4+CD25+ (early activation), % | 7,84 ± 0,84 | 8,37 ± 0,52 | 7,89 ± 0,53 | 8,84 ± 0,66 р4,5 = 0,016 | 6,85 ± 0,55 |
T-лимфоциты CD45+CD3+CD4+CD25+ (ранняя активация), 106 кл/л T lymphocytes CD45+CD3+CD4+CD25+ (early activation), 106 cells/L | 79,05 ± 11,81 р1-3 = 0,033 | 86,35 ± 8,41 р2, 3 = 0,0051 | 50,93 ± 7,37 р3, 4 = 0,049 р3-5 = 0,002 | 73,56 ± 12,02 | 90,60 ± 11,04 |
T-лимфоциты CD45+CD3+CD4+HLA DR+ (поздняя активация), % T lymphocytes CD45+CD3+CD4+HLA-DR+ (late activation), % | 6,39 ± 0,95 | 5,78 ± 0,45 р2-4 = 0,015 | 6,33 ± 0,63 р3, 4 = 0,07 | 8,11 ± 1,13 р4, 5 = 0,032 | 4,75 ± 1,25 |
T-лимфоциты CD45+CD3+CD4+HLA-DR+ (поздняя активация), 106 кл/л T lymphocytes CD45+CD3+CD4+HLA-DR+ (late activation), 106 cells/L | 65,21 ± 10,42 р1-3 = 0,034 | 56,00 ± 4,53 р2, 3 = 0,029 | 40,87 ± 6,12 р3, 4 = 0,035 | 65,44 ± 13,36 | 67,00 ± 21,56 |
Т-регуляторные клетки (CD45+CD3+CD4+ CD25+CD127-), % T regulatory cells (CD45+CD3+CD4+ CD25+CD127-), % | 2,39 ± 0,25 р1, 2 = 0,049 р1-3 = 0,002 р1-4 = 0,001 | 3,22 ± 0,35 р2-4 = 0,014 р2-5 = 0,049 | 3,85 ± 0,42 р3-5 = 0,003 | 4,98 ± 0,78 р4,5 = 0,002 | 2,13 ± 0,34 |
Т-регуляторные клетки (CD 45+CD3+CD4+ CD25+CD127-),106 кл/л T regulatory cells (CD45+CD3+CD4+ CD25+CD127-), 106 cells/L | 24,05 ± 2,01 р1, 2 = 0,049 р1-4 = 0,014 | 34,03 ± 4,55 р2, 3 = 0,074 | 23,80 ± 3,33 р3, 4 = 0,034 | 38,11 ± 7,94 | 27,70 ± 4,68 |
Т-регуляторные клетки поздняя активация (CD 45+CD3+CD4+ CD25+CD127-HLA-DR+), % T regulatory cells late activation (CD45+CD3+CD4+ CD25+CD127-HLA-DR+), % | 6,39 ± 0,95 р1, 2 = 0,049 р1-4 = 0,014 | 5,78 ± 0,45 р2, 3 = 0,074 | 6,33 ± 0,63 р3, 4 = 0,034 | 8,11 ± 1,13 | 4,75 ± 1,25 |
Т-регуляторные клетки поздняя активация (CD45+CD3+CD4+ CD25+CD127-HLA-DR+) абс. T regulatory cells late activation (CD45+CD3+CD4+ CD25+CD127-HLA-DR+) 106 cells/L | 0,92 ± 0,14 р1-3 = 0,049 р1-4 = 0,0012 | 1,04 ± 0,14 р2-4 = 0,002 | 1,37 ± 0,23 | 2,02 ± 0,36 | 0,62 ± 0,11 |
В таблице 2 представлены данные о Т-лимфоцитах, T-NK-лимфоцитах, NK-лимфоцитах, а также Т-регуляторных клетках.
Согласно представленным показателям в таблице 2, у лиц с ОКС и COVID-19 с повышенными NK-клетками наблюдается минимальное число Т-лимфоцитов, Т-хелперов, Т-цитотоксических лимфоцитов, Т-лимфоцитов ранней активации, T-лимфоцитов поздней активации, а также Т-регуляторных клеток в абсолютных единицах по сравнению с другими группами. Наименьший иммунорегуляторный индекс и при этом максимальное число Т-NK-лимфоцитов отмечались у лиц, перенесших COVID-19 и имевших пониженные NK-клетки. Минимальное количество Т-NK-лимфоцитов регистрировалось у больных с низкими NK-клетками, не болевших COVID-19. Минимальные Т-лимфоциты (CD45+CD3+CD4+HLA-DR+) поздней активации выявлены у лиц, переболевших COVID-19, с повышенными и нормальными NK-клетками.
Наименьшее число Т-регуляторных клеток поздней активации отмечалось у пациентов, не болевших COVID-19, но вакцинированных и имеющих нормальное содержание NK-клеток.
Согласно исследованиям Лебедевой О.К. и соавт. [2], у больных с острым инфарктом миокарда регистрировались более низкие CD16(+) Т- и NК-клетки.
Другие авторы [3] отмечают, что у 63,6% лиц с ОКС с имплантированными стентами был отмечен рост NK-лимфоцитов, что могло быть обусловлено усилением активности антитрансплантационного иммунитета.
По данным Liu Y. и соавт. [8], патологический аутореактивный иммунный ответ ответственен за разрыв бляшки и последующее начало ОКС. Регуляторные Т-клетки необходимы для подавления патологического аутореактивного иммунного ответа и поддержания иммунного гомеостаза. У пациентов с ОКС выявлено снижение количества и супрессивной функции Т-регуляторных клеток. Это наблюдается и у наших больных, перенесших COVID-19, и имевших повышенные NK-клетки. Согласно исследованиям Tian X. и соавт. [11], у пациентов с ОКС по сравнению с пациентами со стабильной стенокардией и контрольной группой, нарушение образования Т-регуляторных клеток тесно связано с гиперактивностью симпатической системы.
В работе Gang H. и соавт. [6] отмечено, что Т-цитотоксические клетки от пациентов с ОИМ показали повышенную цитотоксичность по сравнению с контрольной группой. Нарушение регуляции цитотоксических Т-лимфоцитов у пациентов с ОКС и COVID-19 отметили Shafeghat M. и соавт. [9].
Согласно работе Liu P.P. [7], при COVID-19 лимфопения является потенциально связанной со снижением количества Т-хелперов и цитотоксических Т-клеток, что приводит к дисбалансу иммунного ответа, задержке клиренса вируса. Воспаление в сосудистой системе может привести к микроангиопатии с тромбозом, ОКС, внезапной смерти.
В наших исследованиях мы показали, что не все так просто с пациентами, перенесшими ОКС и имеющих те или иные показатели, связанных с определением NK-клеток. Так, больные, перенесшие COVID-19, имеют 3 фенотипа нарушений (пониженное количество NK-клеток нормальное и повышенное), а не перенесшие 2 фенотипа (пониженное количество NK-клеток и нормальное). При этом в этих группах несколько по-разному проявлялись, как нарушения в других компартментах лимфоцитов, так и выраженность клинико-лабораторных изменений. Наиболее тяжелое состояние и степень выраженности иммунных нарушений были выявлены у пациентов, перенесших COVID-19. Проведенное исследование также позволяет более четко определить группы пациентов с ОКС, нуждающихся в дополнительной иммуннокоррекции.
Выводы
- У лиц с острым коронарным синдромом и COVID-19 преимущественно с нормальным и повышенным уровнем NK-клеток в сопоставлении с пациентами ОКС без COVID-19, наблюдалось более тяжелое течение заболевания – превалировали больные с острым инфарктом миокарда, у них выявлен более высокий уровень смертности, увеличена продолжительность лечения, а также чаще отмечались тромбозы стентов.
- У лиц с ОКС и COVID-19 с повышенными NK-клетками наблюдалось максимальное снижение Т-клеточного звена иммунитета: Т-лимфоцитов общих, Т-лимфоцитов-хелперов, Т-цитотоксических лимфоцитов, Т-лимфоцитов ранней активации, Т-регуляторных клеток в абсолютных числах по сравнению с другими группами.
Об авторах
Элеонора Аркадьевна Сафронова
ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ
Автор, ответственный за переписку.
Email: safronovaeleonora68@gmail.com
кандидат медицинских наук, доцент кафедры поликлинической терапии и клинической фармакологии
Россия, ЧелябинскЛиана Валентиновна Рябова
ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения РФ
Email: lianarabowa@rambler.ru
доктор медицинских наук, профессор кафедры Безопасности жизнедеятельности, медицины катастроф, скорой и неотложной медицинской помощи
Россия, 454048, Челябинск, ул. Воровского, 64Список литературы
- Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в медицине и биологии. 2-е изд., доп. и расшир. Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2014. 576 с. [Zurochka A.V., Khaidukov S.V., Kudryavtsev I.V., Chereshnev V.A. Flow cytometry in medicine and biology. 2nd edition, supplemented and expanded]. Yekaterinburg: RIO, Ural Branch of the Russian Academy of Sciences, 2014. 576 p.
- Лебедева О.К., Ермаков А.И., Гайковая Л.Б., Кухарчик Г.А. Особенности моноцитарного и лимфоцитарного ответа при инфаркте миокарда с явлениями острой сердечной недостаточности у пациентов с сахарным диабетом 2 типа // Трансляционная медицина, 2021. Т. 8, № 4. С. 5-17. [Lebedeva O.K., Ermakov A.I., Gaykovaya L.B., Kukharchik G.A. Features of the monocytic and lymphocytic response in myocardial infarction with symptoms of acute heart failure in patients with type 2 diabetes. Translyatsionnaya meditsina = Translational Medicine, 2021, Vol. 8, no. 4, pp. 5-17. (In Russ.)]
- Смирнова И.Н., Антипова И.И., Тицкая Е.В., Зайцев А.А., Барабаш Л.В., Тонкошкурова А.В., Зарипова Т.Н., Коршунов Д.В. Анализ клинико-функционального состояния больных острым коронарным синдромом после эндоваскулярных вмешательств на стационарном этапе реабилитации // Физиотерапия, бальнеология и реабилитация, 2018. Т. 17, № 6. C. 324-331. [Smirnova I.N., Antipova I.I., Titskaya E.V., Zaitsev A.A., Barabash L.V., Tonkoshkurova A.V., Zaripova T.N., Korshunov D.V. Analysis of the clinical and functional state of patients with acute coronary syndrome after endovascular interventions at the stationary stage of rehabilitation. Fizioterapiya, balneologiya i reabilitatsiya = Physiotherapy, Balneology and Rehabilitation, 2018, Vol. 17, no. 6, pp. 324-331. (In Russ.)]
- Хусаинова Л.Н., Смакаева Э.Р., Садикова Р.И., Мингазетдинова Л.Н. Клеточные маркеры апоптоза при остром коронарном синдроме // Медицинский вестник Башкортостана, 2013. Т. 8, № 3. С. 78-81. [Khusainova L.N., Smakaeva E.R., Sadikova R.I., Mingazetdinova L.N. Cellular markers of apoptosis in acute coronary syndrome. Meditsinskiy vestnik Bashkortostana = Medical Bulletin of Bashkortostan, 2013, Vol. 8, no. 3, pp. 78-81. (In Russ.)]
- Bansal M. Cardiovascular disease and COVID-19. Diabetes Syndr., 2020, Vol. 14, no. 3, pp. 247-250.
- Gang H., Peng D., Hu Y., Tang S., Li S., Huang Q. Interleukin-9-secreting CD4+ T cells regulate CD8+ T cells cytotoxicity in patients with acute coronary syndromes. APMIS, 2021, Vol. 129, no. 2, pp. 91-102.
- Liu P.P., Blet A., Smyth D., Li H. The Science Underlying COVID-19: Implications for the Cardiovascular System. Circulation, 2020, Vol. 142, no. 1, pp. 68-78.
- Liu Y., Zhao X., Zhong Y., Meng K., Yu K., Shi H., Wu B., Tony H., Zhu J., Zhu R., Peng Y., Mao Y., Cheng P., Mao X., Zeng Q. Heme oxygenase-1 restores impaired GARPCD4(+)CD25(+) regulatory T cells from patients with acute coronary syndrome by upregulating LAP and GARP expression on activated T lymphocytes. Cell. Physiol. Biochem., 2015, Vol. 35, no. 2, pp. 553-570.
- Shafeghat M., Aminorroaya A., Rezaei N. How stable ischemic heart disease leads to acute coronary syndrome in COVID-19? Acta Biomed., 2021, Vol. 92, no. 5, e2021512. doi: 10.23750/abm.v92i5.12013.
- Sheth A.R., Grewal U.S., Patel H.P., Thakkar S., Garikipati S., Gaddam J., Bawa D. Possible mechanisms responsible for acute coronary events in COVID-19. Med. Hypotheses, 2020, Vol. 143, 110125. doi: 10.1016/j.mehy.2020.110125.
- Tian X., Guo R., Zhang Y., Xu L., Liu X., Hou Y. Effects of the sympathetic nervous system on regulatory T cell and T helper 1 chemokine expression in patients with acute coronary syndrome. Neuroimmunomodulation, 2016, Vol. 23, no. 3, pp. 168-178.