Эффект совместного влияния метотрексата и метаболитов бифидобактерий на продукцию TNFα И IFNγ мононуклеарами периферической крови человека

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Метотрексат является препаратом первой линии для лечения ряда ревматических и неревматических заболеваний, включая онкопатологию, однако его терапевтическая эффективность ограничивается выраженной токсичностью в отношении многих органов (миело-, гепато-, нефротоксичность, мукозит, энтерит, дисбиоз различных биотопов человека и др.). В последнее время в ряде исследований установлено, что метаболиты бифидо- и лактобактерий способны усиливать терапевтический эффект химиотерапевтических препаратов и ограничивать их токсические свойства. Целью работы явилось исследование возможного потенцирующего эффекта бесклеточных супернатантов бифидобактерий при совместном с метатрексатом воздействии на секрецию провоспалительных цитокинов TNFα и IFNγ мононуклеарными клетками периферической крови человека. Изучение иммунорегуляторного влияния метаболитов бифидобактерий, метотрексата и их совместной комбинации оценивали по способности изменять продукцию цитокинов TNFα и IFNγ на модели мононуклеаров при сокультивировании в условиях in vitro. Анализ сочетанного влияния метаболитов бифидобактерий и цитостатика на продукцию цитокинов выявил их синергидный эффект в отношении двух ключевых провоспалительных цитокинов – TNFα и IFNγ усиление, по сравнению с контролем (пробы с метотрексатом без супернатантов бифидобактерий), ингибирования продукции раннего провоспалительного цитокина TNFα и, напротив, усиление стимуляции секреции IFNγ, регулирующего клеточные эффекторы. Полученные результаты на примере исследуемых цитокинов свидетельствуют о наличии потенцирующего влияния метаболитов бифидобактерий на противовоспалительные и иммунорегуляторные свойства метотрексата. Таким образом, метаболиты бифидобактерий могут рассматриваться в качестве перспективного средства, потенцирующего терапевтические свойства метотрексата посредством подавления секреции TNFα и стимуляции IFNγ иммунокомпетентными клетками. Дальнейшее изучение сочетанного влияния метотрексата и метаболитов кишечной микробиоты на продукцию цитокинов различных функциональных групп эффекторными клетками целесообразно для разработки способов усиления терапевтического эффекта метотрексата и ограничения его токсических свойств метаболитами бифидобактерий.

Полный текст

Введение

Метотрексат является препаратом первой линии для лечения ряда ревматических и неревматических заболеваний, включая онкопатологию. Благодаря иммуносупрессивным свойствам, MTX также используется для лечения аутоиммунных заболеваний [3, 15]. Противовоспалительная и иммуномодулирующая активность МТХ определяют его эффективность применения при воспалительных заболеваниях кишечника, рассеянном склерозе, системных заболеваниях [4]. Механизмы действия MTX как противовоспалительного препарата с иммуномодулирующей активностью включают модуляцию аденозиновой сигнализации, изменение цитокиновых сетей, генерацию активных форм кислорода, регуляцию экспрессии некоторых длинных некодирующих РНК [4], подавление медиатора воспаления алармина HMGB1, хемотаксиса и адгезии воспалительных клеток [3].

Широкое применение MTX ограничивается его токсичностью. Одними из клинически значимых проявлений кишечных нарушений вследствие химиотерапии является мукозит, энтерит, в развитии которых нарушения микробиоты играют решающую роль. Изменение микробиоты кишечника человека под влиянием МТХ носит дозозависимый характер [10, 14]. Вместе с тем установлено, что изменения кишечной микробиоты или ее метаболитов могут непосредственно влиять на эффективность и токсичность терапевтических средств [1, 7]. Так, несмотря на выраженные противовоспалительные эффекты MTX, существует высокая доля пациентов, которые не реагируют на MTX или имеют серьезные побочные токсические эффекты. Предполагают, что эти межиндивидуальные различия частично связаны с микробиотой кишечника пациентов [14]. Поэтому некоторые характеристики кишечного микробиома предлагается рассматривать как предиктор клинического ответа на МТХ [12].

В последнее время в ряде исследований установлено, что метаболиты штаммов микробиоты способны усиливать терапевтический эффект химиотерапевтических препаратов, например, установлено усиление терапевтического эффекта химиотерапевтического препарата 5-фторурацила (5-FU) под влиянием супернатанта лактобактерий Lactobacillus plantarum [2].

Учитывая высокую эффективность, широкое применение и вместе с тем многочисленные побочные реакции MTX, одним из подходов оптимизации лечения и снижения токсичности данного препарата может быть использование природных соединений, являющихся вторичными метаболитами нормобиоты человека с широким спектром биологической активности и способных потенцировать терапевтические эффекты метотрексата. Целью работы явилось исследование возможного потенцирующего эффекта бесклеточных супернатантов бифидобактерий при совместном с МТХ воздействии на секрецию провоспалительных цитокинов TNFα и IFNγ мононуклеарными клетками периферической крови человека.

Материалы и методы

Объектами исследования служили штаммы Bifidobacterium bifidum (ICIS-310, ICIS-643, ICIS-202, ICIS-504, ICIS-629) и Bifidobacterium longum (ICIS-505, ICIS-206, ICIS-500, ICIS-627) из коллекции лаборатории инфекционной симбиологии ИКВС УрО РАН. Микробные метаболиты получали из бульонных культур бифидобактерий двукратным центрифугированием при 3200 об/ мин с последующей фильтрацией (мембранные фильтры с диаметром пор 0,22 мкм, Millipore, США).

Мононуклеарные лейкоциты выделяли из гепаринизированной крови здоровых доноров методом градиентного центрифугирования (400 g) в градиенте плотности фиколл-верографин (Pharmacia, Швеция) плотностью 1,077 г/см3. Продукция провоспалительных цитокинов IFNγ и TNFα исследовалась в культуре мононуклеаров, сокультивируемых с метаболитами бифидобактерий с добавлением метотрексата (МТХ, «Сандоз», Словения; лекарственная форма – раствор для инъекций) (опыт 1) в концентрации 5 мкг/ мл и без МТХ (опыт 2). В качестве контроля были использованы пробы, где к периферическим мононуклеарам добавлялся только МТХ (контроль 1) или культуральная среда (контроль 2). После 24-часовой инкубации клеток (2 × 106) при 37 °С в атмосфере 5% СО2 в полной культуральной среде RPMI-1640 с добавлением 10% инактивированной фетальной сыворотки (Sigma, США) и 80 мкг/мл гентамицина. Исследования проводили в 9 дублях для каждого штамма и каждого вида цитокинов. Уровень спонтанной продукции цитокинов после сокультивирования мононуклеаров с метаболитами бактерий исследовали ИФА («Цитокин», Санкт-Петербург). Регистрация результатов проводилась на фотометре Multiskan (Labsystems, Финляндия), длина волны 492 нм.

Статистическую обработку полученных данных проводили средствами пакета Statistica 10 (StatSoft, США) с оценкой различий между величинами по критерию Манна–Уитни (р < 0,05).

Результаты и обсуждение

Анализ влияния метаболитов бифидобактерий на модели мононуклеаров периферической крови человека показал, что метаболиты и B. bifidum, и B. longum подавляли продукцию ключевого провоспалительного цитокина TNFα в 3-5 раз относительно контроля лимфоцитов (350,0±15,0 пг/мл), (р ≤ 0,05). Добавление к периферическим мононуклеарам цитостатика MTX без метаболитов бактерий сопровождалось снижением продукции TNFα в 3,5 раза в сравнении с контролем (р ≤ 0,05). Сочетанное влияние метаболитов бифидобактерий и МТХ также характеризовалось ингибирующим эффектом (68,2-84,7 пг/мл) в отношении провоспалительного цитокина TNFα (р ≤ 0,05). Метаболиты штаммов B. longum обладали более выраженным потенцирующим действием в отношении влияния на секрецию данного цитокина (р ≤ 0,05). Концентрация TNFα в среде культивирования снижалась до 60,0±1,5 пг/ мл в присутствии МТХ и метаболитов штамма B. longum ICIS-505 и до 70,1±2,1 пг/ мл – МТХ и метаболитов штамма B. longum ICIS-206 (р ≤ 0,05).

Вместе с тем содержание другого провоспалительного цитокина IFNγ увеличивалось при добавлении к мононуклеарным лейкоцитам как метаболитов бифидобактерий (в 2-3,5 раза в сравнении с контролем лимфоцитов – 30,4±2,3 пг/ мл) (р ≤ 0,05), так и цитостатика MTX (в 2,3 раза относительно контроля) (р ≤ 0,05). Причем выраженность стимулирующего эффекта возрастала при сочетанном влиянии МТХ и метаболитов бифидобактерий (в среднем до 85,4±3,6 пг/ мл) (р ≤ 0,05). Метаболиты штамма B. longum ICIS-206 в присутствии МТХ стимулировали секрецию IFNγ только до 55,0±3,8 пг/ мл (р ≤ 0,05), а штаммов B. longum ICIS-500 и B. bifidum ICIS-643 – до 114,0±4,3 пг/мл и 107,6±6,1 пг/мл, соответственно (р ≤ 0,05).

Таким образом, было установлено разнонаправленное влияние метаболитов бифидобактерий и МТХ, а также их сочетаний на продукцию двух ключевых провоспалительных цитокинов мононуклеарными лейкоцитами периферической крови человека – TNFα и IFNγ. Показано потенцирующее влияние метаболитов бифидобактерий на ингибирующий эффект цитостатика МТХ в отношении продукции лимфоцитами флогогенного фактора TNFα. Наиболее выраженным эффектом обладали метаболиты штаммов B. longum ICIS-505 и B. longum ICIS-206. Вместе с тем, метаболиты бифидобактерий потенцировали стимулирующее влияние МТХ в отношении секреции медиатора клеточного иммунного ответа – IFNγ.

Оценивая полученные в настоящей работе результаты об усилении бесклеточными супернатантами B. bifidum и B. longum эффекта воздействия метатрексата на продукцию провоспалительных цитокинов, можно предположить, что выявленный потенцирующий эффект обеспечивается наличием в культуральных супернатантах бифидобактерий определенного спектра биологически активных молекул (метаболитов), таких как короткоцепочечные жирные кислоты (SCFAs), представленные ацетатом, пропионатом и бутиратом [7]. Различные таксоны микроорганизмов ответственны за синтез SCFAs. Для Bifidobacterium spp. специфичными метаболитами являются ацетат, пропионат, лактат и в меньшей степени бутират. После попадания в эпителиальные клетки кишечника SCFAs выполняют регуляторную роль, взаимодействуя со специфическими рецепторами, связанными с G-белком (GPCR) и/или гистондеацетилазами (HDACs) [6].

В настоящее время метаболитам бифидобактерий отводится важная роль в усилении терапевтического эффекта ряда химиотерапевтических препаратов. Благодаря способности бифидобактерий и их метаболитов к биотрансформации противоопухолевых препаратов [13], образуются соединения с усиленной цитотоксичностью в отношении раковых клеток [9]. Протективный эффект бифидо- и лактобактерий и их метаболитов проявляется в антиоксидантных и антипролиферативных эффектах через ингибирование NF-êB, участвующего в пролиферации клеток и играющего критическую роль в воспалительном процессе [5], в регуляции генов с про- и антиапоптотической активностью [8]. Наряду с бифидобактериями, усиливать действие МТХ могут и Bacteroides fragilis. В работе Zhou B. и соавт. (2022) на мышиной модели коллаген-индуцированного артрита показано, что MTX не оказывает терапевтического эффекта при отсутствии в кишечнике Bacteroides fragilis [15]. Введение B. fragilis восстанавливало эффективность MTX и сопровождалось увеличением уровня бутирата.

Заключение

Поиск перспективных природных компонентов, направленных на уменьшение токсичности и побочных эффектов химиотерапевтических препаратов, в частности метотрексата, представляет собой будущее направление в терапии различных воспалительных, аутоиммунных и лимфопролиферативных заболеваний. Современные терапевтические стратегии, использующие кишечную микробиоту и ее метаболиты в сочетании с химиотерапией и иммунотерапией, могут предоставить новые возможности для кишечной микробиоты и ее метаболитов стать адъювантами для специфической терапии пролиферативных заболеваний [11]. Результаты настоящего исследования дают основание для дальнейшей разработки направления, позволяющего рассматривать метаболиты бифидобактерий в качестве перспективного средства, потенцирующего терапевтические свойства метотрексата посредством подавления секреции TNFα и стимуляции IFNγ иммунокомпетентными клетками. Дальнейшее изучение сочетанного влияния цитостатиков, в частности метотрексата, и метаболитов кишечной микробиоты целесообразно для разработки способов усиления терапевтического эффекта метотрексата и ограничения его токсических свойств метаболитами бифидобактерий.

×

Об авторах

Елена Валерьевна Иванова

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН – обособленное структурное подразделение ФГБУН Оренбургского федерального исследовательского центра УрО РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: walerewna13@gmail.com

доктор медицинских наук, доцент, заведующая лабораторией инфекционной симбиологии

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Ирина Николаевна Чайникова

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН – обособленное структурное подразделение ФГБУН Оренбургского федерального исследовательского центра УрО РАН

Email: inchainicova@yandex.ru

доктор медицинских наук, профессор, ведущий научный сотрудник лаборатории инфекционной симбиологии

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Анастасия Владимировна Бекпергенова

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН – обособленное структурное подразделение ФГБУН Оренбургского федерального исследовательского центра УрО РАН

Email: nsavasteeva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-5020-2493

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории Инфекционной симбиологии Института клеточного и внутриклеточного симбиоза

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Таисия Александровна Бондаренко

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН – обособленное структурное подразделение ФГБУН Оренбургского федерального исследовательского центра УрО РАН

Email: semenovih88@mail.ru

научный сотрудник лаборатории инфекционной симбиологии, Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Ольга Ефимовна Челпаченко

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН – обособленное структурное подразделение ФГБУН Оренбургского федерального исследовательского центра УрО РАН

Email: oech57@gmail.com

доктор медицинских наук, профессор, ведущий научный сотрудник лаборатории инфекционной симбиологии

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Ирина Александровна Здвижкова

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН – обособленное структурное подразделение ФГБУН Оренбургского федерального исследовательского центра УрО РАН

Email: zdvizhkova.irina@gmail.com

научный сотрудник лаборатории инфекционной симбиологии

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Наталья Борисовна Перунова

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН – обособленное структурное подразделение ФГБУН Оренбургского федерального исследовательского центра УрО РАН

Email: perunovanb@gmail.com

доктор медицинских наук, профессор РАН, заместитель директора по научной работе

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Олег Валерьевич Бухарин

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН – обособленное структурное подразделение ФГБУН Оренбургского федерального исследовательского центра УрО РАН

Email: ofrc@list.ru

доктор медицинских наук, академик РАН, научный руководитель

Россия, 460000, Оренбург, ул. Пионерская, 11

Список литературы

  1. Alexander J.L., Wilson I.D., Teare J., Marchesi J.R., Nicholson J.K., Kinross J.M. Gut microbiota modulation of chemotherapy efficacy and toxicity. Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol., 2017, Vol. 14, no. 6, pp. 356-365.
  2. An J., Ha E.M. Combination therapy of Lactobacillus plantarum supernatant and 5-fluouracil increases chemosensitivity in colorectal cancer cells. J. Microbiol Biotechnol., 2016, Vol. 26, no. 8, pp. 1490-14503.
  3. Bedoui Y., Guillot X., Sélambarom J., Guiraud P., Giry C., Jaffar-Bandjee M.C., Ralandison S., Gasque P. Methotrexate an old drug with new tricks. Int. J. Mol. Sci., 2019, Vol. 20, no. 20, 5023. doi: 10.3390/ijms20205023.
  4. Cronstein B.N., Aune T.M. Methotrexate and its mechanisms of action in inflammatory arthritis. Nat. Rev. Rheumatol., 2020, Vol. 16, no. 3, pp. 145-154.
  5. Faghfoori Z., Faghfoori M.H., Saber A., Izadi A., Yari Khosroushahi A. Anticancer effects of bifidobacteria on colon cancer cell lines. Cancer Cell. Int., 2021, Vol. 21, no. 1, 258. doi: 10.1186/s12935-021-01971-3.
  6. Husted A.S., Trauelsen M., Rudenko O., Hjorth S.A., Schwartz T.W. GPCR-mediated signaling of metabolites. Cell Metab., 2017, Vol. 25, no. 4, pp. 777-796.
  7. Koh A., de Vadder F., Kovatcheva-Datchary P., Bäckhed F. From dietary fiber to host physiology: short-chain fatty acids as key bacterial metabolites. Cell, 2016, Vol. 165, no. 6, pp. 1332-1345.
  8. Nowak A., Paliwoda A., Błasiak J. Anti-proliferative, pro-apoptotic and anti-oxidative activity of Lactobacillus and Bifidobacterium strains: A review of mechanisms and therapeutic perspectives. Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2019, Vol. 59, no. 21, pp. 3456-3467.
  9. Oliveira Silva E., Cruz de Carvalho T., Parshikov I.A., Alves dos Santos R., Silva Emery F., Jacometti Cardoso Furtado N.A. Cytotoxicity of lapachol metabolites produced by probiotics. Lett. Appl. Microbiol., 2014, Vol. 59, no. 1, pp. 108-114.
  10. Renuka R., Nayak M.A., Ishani D., Kye Stapleton-Gray, Bipin R., Patterson A.D., Ubeda C., Scher J.U., Turnbaugh P.J. Methotrexate impacts conserved pathways in diverse human gut bacteria leading to decreased host immune activation. Cell Host Microbe, 2021, Vol. 29, no. 3, pp. 362-377.e11.
  11. Said S.S., Ibrahim W.N. Cancer resistance to immunotherapy: comprehensive insights with future perspectives. Pharmaceutics, 2023, Vol. 15, no. 4, 1143. doi: 10.3390/pharmaceutics15041143.
  12. Scher J.U., Nayak R.R., Ubeda C., Turnbaugh P.J., Abramson S.B. Pharmacomicrobiomics in inflammatory arthritis: gut microbiome as modulator of therapeutic response. Nat. Rev. Rheumatol., 2020, Vol. 16, no. 5, pp. 282-292.
  13. Wei H., Chen L., Lian G., Yang J., Li F., Zou Y., Lu F., Yin Y. Antitumor mechanisms of bifidobacteria. Oncol. Lett., 2018, Vol. 16, no. 1, pp. 3-8.
  14. Yan H., Su R., Xue H., Gao C., Li X., Wang C. Pharmacomicrobiology of methotrexate in rheumatoid arthritis: gut microbiome as predictor of therapeutic response. Front. Immunol., 2021, Vol. 12, 789334. doi: 10.3389/fimmu.2021.789334.
  15. Zhou B., Dong C., Zhao B., Lin K., Tian Y., Zhang R., Zhu L., Xu H., Yang L. Bacteroides fragilis participates in the therapeutic effect of methotrexate on arthritis through metabolite regulation. Front. Microbiol., 2022, Vol. 13, 1015130. doi: 10.3389/fmicb.2022.1015130.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Иванова Е.В., Чайникова И.Н., Бекпергенова А.В., Бондаренко Т.А., Челпаченко О.Е., Здвижкова И.А., Перунова Н.Б., Бухарин О.В., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах