Content of BB platelet growth factor in platelet lysates obtained from donor blood
- Authors: Shupletsova V.V.1, Khaziakhmatova O.G.1, Malashchenko V.V.1, Borisenko S.L.2, Gabrelyan N.V.1, Umarova M.M.1, Goncharov A.G.1, Litvinova L.S.1
-
Affiliations:
- Immanuel Kant Baltic Federal University
- Blood Transfusion Station of the Kaliningrad Region
- Issue: Vol 28, No 2 (2025)
- Pages: 171-176
- Section: SHORT COMMUNICATIONS
- Submitted: 24.07.2024
- Accepted: 06.08.2024
- Published: 16.02.2025
- URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/17025
- DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-17025-COB
- ID: 17025
Cite item
Full Text
Abstract
Cell therapy is among the main methodological approaches in regenerative medicine. Its effectiveness is determined by the use of cell cultures containing the largest available number of viable cells. An important role in this process is played by growth factors that ensure cell proliferation and differentiation. Both recombinant proteins and native proteins from various biological fluids may be used as growth factors. Blood platelets, being anucleate cells, are a promising source of growth factors. Along with their main blood clotting function, the platelets contain a number of unique biological molecules in alpha granules, i.e., mediators involved in immune response, inflammation and regeneration processes. The major families of growth factors present in platelets are: platelet-derived growth factors (PDGF), transforming growth factors (TGF-β), vascular endothelial growth factors (VEGF), epithelial growth factors (EGF), fibroblast growth factors (FGF), insulin-like growth factors (IGFs). The PDGF family includes several subtypes: PDGF-AA, PDGF-BB, PDGF-AB, PDGF-CC, PDGF-DD. PDGF-BB has high angiogenic, chemotactic and mitogenic activity. It takes part in the proliferation and migration of interstitial cells in various organs, proliferation of smooth muscle cells in respiratory tract, development of cerebral vessels and renal glomeruli. The aim of our study was to examine the content of PDGF-BB factor in platelet lysates obtained from healthy donors. Platelet lysate is a complex cocktail containing many growth factors, cytokines, and chemokines. The concentration of specific factors in final product obtained from platelet concentrate is different for each donor, and, apparently, depends on age, gender, blood type and other individual differences. When choosing a growth additive for a cell culture, the cell biologist should be focused on high content of the trophic factor that most closely matches the goals of the given experiment. The use of recombinant additives in the culture medium is justified by precise dosage of these components. However, the use of natural sources may be more preferable, due to presence of different growth factors required for in vitro expansion of highly cellular viable cultures. According to our results, the optimal additive for obtaining viable fibroblasts, endothelial cells, mesenchymal multipotent stem cells is a growth-inducing product obtained from platelet lysate of female donors of Bα (III) group, and male donors of Aβ (II) blood groups which contain the highest concentration of PDGF-BB.
Full Text
Введение
Одним из основных инструментов регенеративной медицины являются клеточные культуры [2]. С каждым годом они находят все более широкое применение как экспериментальные модели для скрининга лекарственных веществ, так и непосредственно в качестве средства персонифицированной терапии клетками. Соответственно, перед специалистами в области клеточных технологий и регенеративной медицины ставятся задачи получения жизнеспособных, функционально активных и хорошо воспроизводимых клеточных линий. Кроме того, одной из основных характеристик качества клеточной культуры является количество живых клеток в единице объема среды, поскольку именно от этого параметра зависит эффективность клеточных вакцин. Высокая «клеточность» достигается за счет ряда факторов, таких как качество взятия первичного материала, выполнение манипуляций с соблюдением асептики и профилактика контаминаций методами антисептики. Важнейшим методологическим подходом к получению качественных клеточных культур является применение питательной среды, соответствующей клеточному составу культуры и задачам эксперимента [15]. В настоящее время на рынке биомедицинских товаров имеется достаточно большой выбор естественных и синтетических сред для культивирования клеток. Они различаются по солевому составу, наличием или отсутствием сыворотки человека или животных и другим компонентам [3]. Важнейшей характеристикой таких сред является наличие так называемых факторов роста, которые призваны стимулировать рост и дифференцировку той или иной клеточной линии [12]. В качестве факторов роста могут быть использованы как рекомбинантные белки, так и белки, содержащиеся в различных биологических жидкостях. К естественным источникам факторов роста можно отнести сыворотку, плазму и другие компоненты крови человека или животных. Их использование имеет некоторые ограничения, например, потенциальная вероятность бактериальной или вирусной контаминации клеточной культуры. Этот недостаток преодолевается исследованием исходного (донорского) материала на наличие антител к основным инфекциям и добавлением в культуру антибиотиков и антимикотиков. Одним из перспективных источников факторов роста являются безъядерные форменные элементы крови – тромбоциты. Помимо основной функции – участия в гемостазе, в альфа-гранулах тромбоцитов содержится ряд уникальных биологических молекул/медиаторов, участвующих в реакциях иммунной системы, механизмах воспаления и регенерации. Основными семействами факторов роста, присутствующими в тромбоцитах, являются: тромбоцитарные факторы роста (PDGF), трансформирующие факторы роста (TGF-β), факторы роста эндотелия сосудов (VEGF), факторы роста эпителия (EGF), факторы роста фибробластов (FGF), инсулиноподобные факторы роста (IGF) [4]. Семейство факторов PDGF включает в себя несколько подтипов: PDGF-AA, PDGF-BB, PDGF-AB, PDGF- CC, PDGF-DD [7]. В целом, физиологические функции всех членов семейства PDGF направлены на ангиогенез, регенерацию ран и эмбриональное развитие и др. Однако клетки-мишени для отдельных изомеров факторов и, соответственно, физиологические эффекты несколько отличаются друг от друга [11]. Рецепторы для PDGF-ВВ (α-PDGF и β-PDGF) экспрессируются на эндотелиальных клетках сосудов, мезенхимальных стволовых клетках печени, почек, сердца, мозга, сухожилий, мышц. Специфичным для PDGF-BB выступает широко распространенный в тканях человека β-PDGF-рецептор. Его активация запускает ряд сигнальных путей (PI3K, MAPK, PLCγ, JAK), которые регулируют рост и пролиферацию клеток, метаболизм клеток, вступление в апоптоз. Обладая высокой ангиогенной, хемотаксической и митогенной активностью, PDGF-BB принимает участие в пролиферации и миграции интерстициальных клеток различных органов, пролиферации гладкомышечных клеток дыхательных путей, развитии сосудов головного мозга и почечных клубочков [3, 10].
Однако, несмотря на большое количество работ, посвященных изучению влияния различных факторов, продуцируемых тромбоцитами, на параметры клеточного гомеостаза в условиях in vitro и in vivo, на сегодняшний день нет четких данных о количественном содержании членов семейства PDGF, в частности подтипа BB, в лизатах тромбоцитов, полученных от разных групп доноров, в зависимости от пола, группы крови, резус-фактора и др., что и определило цель настоящего исследования.
Материалы и методы
Для решения поставленной цели нами проанализировано на содержание тромбоцитарного фактора роста (PDGF) в лизатах тромбоцитов, выделенных из донорской крови 112 здоровых доноров. Донорский материал получали на ГБУЗ «Станция переливания крови Калининградской области». Все добровольцы состояли на учете как постоянные доноры, которые проходят периодический медицинский осмотр, а перед кроводачей прошли обследование у терапевта. Полученные образцы крови были исследованы на наличие антител к основным инфекциям, был проведен общий и биохимический анализ периферической крови. Исследуемая группа включала 64 мужчины и 64 женщины в возрасте от 26 до 45 лет. Кроме того, все добровольцы были разбиты на подгруппы по принадлежности к группам крови и резус-фактору. Полученная донорская кровь (в объеме 450 мл) на станции переливания крови проходила следующие технологические процедуры: центрифугирование с целью получения эритроцитарной массы и плазмы. Осадок в виде тромбо-лейкоцитарной взвеси в объеме 50-80 мл поступал для дальнейшего анализа в Центр иммунологии и клеточных биотехнологий (ЦИКБ) БФУ им. И. Канта. Экспериментальные образцы были стандартизированы по количеству тромбоцитов – 1 × 108 тр/мл. Лизат тромбоцитов получали по оригинальной методике, разработанной в ЦИКБ. В серии экспериментов нами была адаптирована и апробирована методика получения лизата тромбоцитов, с определением оптимальных режимов замораживания, размораживания и центрифугирования тромбоцитарного концентрата. Содержание PDGF-BB в тромболизатах, полученных от разных групп доноров, определяли методом проточной флуориметрии с использованием автоматизированной системы анализа белков (Bio-Plex Protein Assay System, Bio-Rad, США) и коммерческой тест-системы (Bio-Plex Pro Human Cytokine 27-plex Assay, Bio-Rad, Hercules, CA, США), в соответствии с протоколом производителя, с использованием программного обеспечения (Bio-Plex Manager, Bio-Rad, США).
Статистическая обработка полученных результатов
Анализ совокупности экспериментальных данных, полученных в ходе исследования, проводился с помощью программы по статистической обработке экспериментальных данных SPSS Statistics. Исследование нормальности распределения количественных характеристик проводили с использованием критерия Краскела–Уоллиса. Так как данные соответствовали нормальному распределению, гипотезу о равенстве выборочных средних проверяли с использованием t-критерия Стьюдента (двусторонний, непарный с неравным отклонением) для сравнения групп. Различия считались достоверными при уровне значимости р < 0,05.
Результаты и обсуждение
Ростовой фактор PDGF-BB играет важную роль в рекрутировании периферических клеток и регуляции гематоэнцефалического барьера, а также участвует в заживлении ран. Нарушение сигнального пути PDGF-BB/PDGFR способствуют развитию атеросклероза, пролиферативной диабетической ретинопатии и др. [5]. Кроме того, описано участие патогенных вариантов PDGF-BB в формировании дерматофибросарком, индукции некинезигенной дискинезии и идиопатической кальцификации базальных ганглиев [9, 13, 14]. Препараты на основе рекомбинантгного PDGF-BB широко используются для лечения ран и травмированных сухожилий, для регенерации твердых и мягких тканей ротовой полости, в терапии остеопороза [6, 8, 11]. Исследования PDGF-BB, его рецепторов, путей активации и ингибирования пока не раскрыли до конца терапевтический потенциал этой молекулы как минимум он является многоцелевым митогеном, позволяющим быстро наращивать жизнеспособные культуры клеток разного происхождения. Определенным ограничением является различный уровень содержания факторов роста у различных доноров. С одной стороны, этот недостаток можно преодолеть пулированием донорского материала, с другой стороны, можно изначально подбирать группы доноров по содержанию в их материале тех или иных ростовых факторов. Применение такого рода скрининга позволит оптимизировать получение ростовых добавок из донорского материала с точки зрения эффективности и экономики.
В соответствии с поставленной целью, одной из задач являлось получение тромбоконцентрата для последующего лизиса. После получения тромбоконцентрата в объеме от 20-30 мл, в каждом образце проводился подсчет количества тромбоцитов в 1 мл. Полученные результаты были сопоставлены с данными доноров по группе крови, резус-фактору, полу и возрасту. Анализ количества тромбоцитов показал, что содержание тромбоцитов в образцах статистически не различались в изученных группах и находились в диапазоне от 1,1 × 108/мл до 2,9 × 108/мл. Принадлежность доноров к группе по резус-фактору не оказывала влияния на содержание PDGF-BB фактора в лизатах тромбоцитов.
Интересным является тот факт, что количество этого ростового фактора в лизатах тромбоцитов в группах, распределенных по полу и группам крови, значимо различалось (табл. 1).
Таблица 1. Содержание PDGF-BB в лизатах тромбоцитов, полученных от различных групп доноров, M ± Σ
Table 1. PDGF-BB content in platelet lysates obtained from various donor groups, M ± Σ
Группы доноров Donor groups n = 16 | Концентрация PDGF-BB, пг/мл PDGF-BB concentration, pg/mL | p |
Женщины, 0αβ (I) / Women, 0αβ (I) | 6254,2 ± 1030,1 | 0,0704 |
Мужчины, 0αβ (I) / Men, 0αβ (I) | 7147,1 ± 1583,9 | |
Женщины, Aβ (II) / Women, Aβ (II) | 6243,1 ± 1050,1 | 0,0031 |
Мужчины, Aβ (II) / Men, Aβ (II) | 9620,9 ± 3792,8 | |
Женщины, Bα (III) / Women, Bα (III) | 10646,1 ± 5665,0 | 0,0402 |
Мужчины, Bα (III) / Men, Bα (III) | 7343,5 ± 1947,3 | |
Женщины, ABо (IV) / Women, ABо (IV) | 6656,9 ± 2310,1 | 0,1214 |
Мужчины, ABо (IV) / Men, ABо (IV) | 8527,5 ± 4046,1 |
Примечание. p < 0,05 – достоверные различия между содержанием PDGF-BB в лизатах тромбоцитов у мужчин и женщин с одной группой крови.
Note. p < 0.05, significant differences between the content of PDGF-BB in platelet lysates in men and women with the same blood type.
Так, у женщин-доноров с 0αβ (I) и Aβ (II) группами крови, регистрировались самые низкие (в сравнении с другими группами исследования) показатели содержания PDGF-BB в лизатах тромбоцитов, тогда как самые высокие значения исследуемого показателя (в сравнении с другими группами исследования) были получены у мужчин c Aβ (II) и женщин с Bα (III) группой крови (p < 0,05) (табл. 1).
Установленный нами факт, демонстрирующий значимые различия в содержании PDGF- BB в лизатах тромбоцитов, полученных от разных групп доноров, требует дальнейшего изучения. Ограничением нашего исследования является относительно малая выборка доноров.
Заключение
Лизат тромбоцитов представляет собой сложный коктейль, содержащий множество ростовых факторов, цитокинов, хемокинов. Концентрация каждого из них в продукте, получаемом из тромбоконцентрата у каждого донора различна, и, по-видимому, зависит от возраста, пола, группы крови и других индивидуальных отличий. При выборе ростовой добавки к культуре клеток, клеточный биолог призван ориентироваться на высокое содержание того трофического фактора, который наиболее точно соответствует задачам эксперимента. Применение рекомбинантных добавок в культуральную среду оправдано точным дозированием компонентов, однако использование естественных источников, возможно, более предпочтительно за счет наличия в них широкого спектра ростовых факторов, необходимых для получения высококлеточных жизнеспособных культур. Согласно результатам нашего исследования, для получения жизнеспособных фибробластов, эндотелиоцитов, мезенхимальных мультипотентных стволовых клеток, наиболее оптимальной является ростовая добавка, полученная из лизата тромбоцитов женщин-доноров Bα (III) и мужчин-доноров Aβ (II) группы крови, содержащих наиболее высокую концентрацию PDGF-BB.
About the authors
V. V. Shupletsova
Immanuel Kant Baltic Federal University
Author for correspondence.
Email: vshupletsova@mail.ru
PhD (Biology), Senior Researcher, Center for Immunology and Cellular Biotechnologies
Russian Federation, KaliningradO. G. Khaziakhmatova
Immanuel Kant Baltic Federal University
Email: vshupletsova@mail.ru
PhD (Biology), Senior Researcher, Center for Immunology and Cellular Biotechnologies
Russian Federation, KaliningradV. V. Malashchenko
Immanuel Kant Baltic Federal University
Email: vshupletsova@mail.ru
PhD (Biology), Researcher, Center for Immunology and Cellular Biotechnologies
Russian Federation, KaliningradS. L. Borisenko
Blood Transfusion Station of the Kaliningrad Region
Email: vshupletsova@mail.ru
Software Engineer
Russian Federation, KaliningradN. V. Gabrelyan
Immanuel Kant Baltic Federal University
Email: vshupletsova@mail.ru
Master’s Student, Institute of Medicine and Life Sciences
Russian Federation, KaliningradM. M. Umarova
Immanuel Kant Baltic Federal University
Email: vshupletsova@mail.ru
Master’s Student, Institute of Medicine and Life Sciences
Russian Federation, KaliningradA. G. Goncharov
Immanuel Kant Baltic Federal University
Email: vshupletsova@mail.ru
PhD (Medicine), Senior Researcher, Center for Immunology and Cellular Biotechnologies
Russian Federation, KaliningradL. S. Litvinova
Immanuel Kant Baltic Federal University
Email: vshupletsova@mail.ru
PhD, MD (Medicine), Director, Center for Immunology and Cellular Biotechnologies
Russian Federation, KaliningradReferences
- Василевич Н.И., Честков В.В. Бессывороточные питательные среды: научные, этические и биотехнологические аспекты // Лаборатория и производство, 2019. № 6 (10). С. 64-71. [Vasilevich N.I., Chestkov V.V. Serum-free nutrient media: scientific, ethical and biotechnological aspects. Laboratoriya i proizvodstvo = Laboratory and Production, 2019, no. 6 (10), pp. 64-71. (In Russ.)]
- Ткачук В.А. Регенеративная биомедицина в биологии и медицине // Регенерация органов и тканей, 2023. Т. 1, № 1. С. 7-15. [Tkachuk V.A. Regenerative biomedicine in biology and medicine. Regeneratsiya organov i tkaney = Regeneration of Organs and Tissues, 2023, Vol. 1, no. 1, pp. 7-15. (In Russ.)]
- Ai J.Y., Liu C.F., Zhang W., Rao G.W. Current status of drugs targeting PDGF/PDGFR. Drug Discov. Today, 2024, Vol. 29, no. 7, 103989. doi: 10.1016/j.drudis.2024.103989.
- Burnouf T., Chou M.L., Lundy D.J., Chuang E.Y., Tseng C.L., Goubran H. Expanding applications of allogeneic platelets, platelet lysates, and platelet extracellular vesicles in cell therapy, regenerative medicine, and targeted drug delivery. J. Biomed. Sci., 2023, Vol. 30, no. 1, 79. doi: 10.1186/s12929-023-00972-w.
- Cao Z., Liu Y., Wang Y., Leng P. Research progress on the role of PDGF/PDGFR in type 2 diabetes. Biomed. Pharmacother., 2023, Vol. 164, 114983. doi: 10.1016/j.biopha.2023.114983.
- Chen M., Chang C., Levian B., Woodley D.T., Li W. Why are there so few FDA-approved therapeutics for wound healing? Int. J. Mol. Sci., 2023, Vol. 24, no. 20, 15109. doi: 10.3390/ijms242015109.
- Fredriksson L., Li H., Eriksson U. The PDGF family: four gene products form five dimeric isoforms. Cytokine Growth Factor Rev., 2004, Vol. 15, no. 4, pp. 197-204.
- Galarraga-Vinueza M.E., Barootchi S., Nevins M.L., Nevins M., Miron R.J., Tavelli L. Twenty-five years of recombinant human growth factors rhPDGF-BB and rhBMP-2 in oral hard and soft tissue regeneration. Periodontol. 2000, 2024, Vol. 94, no. 1, pp. 483-509.
- Jahanseir K., Xing D., Greipp P.T., Sukov W.R., Keeney G.L., Howitt B.E., Schoolmeester J.K. PDGFB Rearrangements in dermatofibrosarcoma protuberans of the vulva: a study of 11 cases including myxoid and fibrosarcomatous variants. Int. J. Gynecol. Pathol., 2018, Vol. 37, no. 6, pp. 537-546.
- Mihaylova Z., Tsikandelova R., Sanimirov P., Gateva N., Mitev V., Ishkitiev N. Role of PDGF-BB in proliferation, differentiation and maintaining stem cell properties of PDL cells in vitro. Arch. Oral Biol., 2018, Vol. 85, pp. 1-9.
- Patenall B.L., Carter K.A., Ramsey M.R. Kick-starting wound healing: a review of pro-healing drugs. Int. J. Mol. Sci., 2024, Vol. 25, no. 2, 1304. doi: 10.3390/ijms25021304.
- Price P.J. Best practices for media selection for mammalian cells. In vitro Cell. Dev. Biol. Anim., 2017, Vol. 53, no. 8, pp. 673-681.
- Sekine S.I., Kaneko M., Tanaka M., Ninomiya Y., Kurita H., Inden M., Yamada M., Hayashi Y., Inuzuka T., Mitsui J., Ishiura H., Iwata A., Fujigasaki H., Tamaki H., Tamaki R., Kito S., Taguchi Y., Tanaka K., Atsuta N., Sobue G., Kondo T., Inoue H., Tsuji S., Hozumi I. Functional evaluation of PDGFB-variants in idiopathic basal ganglia calcification, using patient-derived iPS cells. Sci. Rep., 2019, Vol. 9, no. 1, 5698. doi: 10.1038/s41598-019-42115-y.
- Wang C., Ma X., Xu X., Huang B., Sun H., Li L., Zhang M., Liu J.Y. A PDGFB mutation causes paroxysmal nonkinesigenic dyskinesia with brain calcification. Mov. Disord., 2017, Vol. 32, no. 7, pp. 1104-1106.
- Yao T., Asayama Y. Animal-cell culture media: History, characteristics, and current issues. Reprod. Med. Biol., 2017, Vol. 16, no. 2, pp. 99-117.
Supplementary files
