Спонтанная продукция цитокинов в супернатантах культур клеток, выделенных из периферической крови, лимфоузлов, селезенки, тимуса и кожи в модели острого псориазоподобного дерматита у мышей
- Авторы: Сорокина Е.В.1,2, Ахматова Э.А.1, Столпникова В.Н.1, Калиниченко Е.О.1, Бишева И.В.1, Сходова С.А.1
-
Учреждения:
- ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
- Академия постдипломного образования ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства» России
- Выпуск: Том 27, № 1 (2024)
- Страницы: 15-22
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- Дата подачи: 02.10.2023
- Дата принятия к публикации: 03.12.2023
- Дата публикации: 06.08.2024
- URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/15879
- DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-15879-SCP
- ID: 15879
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Для изучения патогенетических механизмов псориаза и применения новых терапевтических средств для его лечения широко применяется имиквимод-индуцированная модель псориаза на мышах. Имиквимод в виде кожных аппликаций, являясь модификатором иммунного ответа, запускает сложный многостадийный процесс, имитирующий псориатическое воспаление кожных покровов, сопровождающееся изменением продукции цитокинов. Целью данной работы стало комплексное изучение спонтанной продукции цитокинов в супернатантах клеток, выделенных не только из кожи и крови, но и из центральных и периферических лимфоидных органов и влияние на него имиквимода. 46 мышей линии C57BL/6 были распределены в две группы – контрольную (n = 22) и опытную (n = 24). Формирование экспериментальной патологии было проведено по методу L. van der Fits и соавт. Мышам опытной группы в течение 7 дней наносили крем, содержащий 5%-ный имиквимод (62,5 мг/см2/сутки/мышь). Интенсивность кожного воспаления оценивали по балльной шкале. На 7-й день эксперимента были взяты пробы крови, извлекали селезенку, лимфатические узлы, тимус, а также получали биоптат кожи размерами 2/2 см. Для получения клеточной суспензии биоптаты селезенки, лимфатических узлов, тимуса измельчали в гомогенизаторе, а затем пропускали через клеточные фильтры с диаметром пор 50 мкм. Для изоляции клеток из кожи применяли метод спонтанной миграции. Культуру клеток периферической крови, селезенки, лимфатических узлов, тимуса, кожи инкубировали 24 часа в RPMI-1640, затем исследовали спонтанную продукцию цитокинов. Уровень цитокинов определяли при помощи тест-системы Mouse Th1/Th2/Th17 Panel (Antigenix America) с использованием шариков, сенсибилизированных моноклональными антителами к цитокинам IFNγ (интерферон гамма), интерлейкинам IL-1β, IL-5, IL-6, IL-10, IL-17, TNFα (фактор некроза опухоли альфа), IL-10. Проведенное исследование выявило, что клетки, выделенные из крови и других лимфоидных органов, в процессе культивирования синтезируют повышенные количества цитокинов, обладающих провоспалительным потенциалом, в первую очередь IL-1 и IL-17. Наиболее выраженные изменения цитокинового профиля наблюдаются в супернатантах культивируемых клеток крови, кожи и селезенки.
Ключевые слова
Полный текст
Введение
Для исследования патогенетических механизмов развития псориаза и изучения новых терапевтических средств успешно применяется мышиная имиквимод-индуцированная модель псориаза [2, 12, 14]. Многочисленными исследованиями установлено, что псориаз относится к аутоиммунным заболеваниям, и в его течении важное участие принимают клеточные механизмы [6, 7, 8]. Поэтому получение сведений о субпопуляционном составе клеток крови и способности их продуцировать широкий спектр цитокинов (провоспалительных, противовоспалительных, регуляторных) на разных стадиях патологического процесса несет важную информацию для иммунологов и дерматологов [5, 7, 9]. Применение имиквимод-индуцированной модели псориаза дает исследователям дополнительные возможности в виде изучения продукции цитокинов не только клетками крови, но и клетками, выделенными из кожи, а также селезенки, лимфатических узлов и тимуса. При изучении опубликованных работ по данной теме нами встречались разрозненные данные по продукции отдельных цитокинов, клетками, выделенными из отдельных органов. Нами была поставлена задача комплексно изучить цитокиновые профили клеток не только крови, но и центральных и периферических лимфоидных органов экспериментальных животных.
Материалы и методы
Исследование проводилось на самках мышей линии C57BL/6, массой 18-20 г, полученных из питомника «Столбовая» Московской области. Животные были ранжированы путем случайного распределения на 2 группы. Исследование было одобрено локальным этическим комитетом ФГБНУ НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова. Опытная и контрольная группы животных содержались в соответствии с этическим требованиям фармакологического комитета (1999). На мышах группы 1 (опытная, n = 24) воспроизводили модель псориазоподобного дерматита с помощью индуктора патологии (имиквимод); группа 2, контрольная, (n = 22), не получала препаратов. За один день до начала исследования всем животным удаляли шерсть площадью примерно равной 6 см2 (2 × 3 см) с помощью гипоаллергенного эпилирующего крема. Формирование экспериментальной патологии было проведено по методу L. van der Fits и соавт. (2009) [15], с дозой индуктора патологии (крем, содержащий 5%-ный имиквимод) 62,5 мг/см2 в день на животное (ежедневная доза 3,125 мг активного соединения) в течение 7 дней. Кровь для иммунологических исследований отбирали в пробирки с гепарином в объеме 200 мкл на 7-й день исследования. У лабораторных животных извлекали селезенку, лимфатические узлы (подмышечные, паховые), тимус, а также получали биоптат кожи размерами 2 × 2 см (в месте формирования патологии, у здоровых мышей – в этой же локализации). Для изоляции клеток из кожи применяли метод спонтанной миграции [13].
Определение концентрации свободных цитокинов в супернатантах мононуклеарных лейкоцитов (МНЛ) периферической крови, селезенки, лимфоузлов, тимуса и кожи мышей
Культуру МНЛ периферической крови, селезенки, лимфатических узлов, тимуса, кожи инкубировали 24 часа в ростовой среде RPMI-1640, затем исследовали спонтанную продукцию цитокинов в супернатантах МНЛ. Уровень цитокинов определяли при помощи тест-системы Mouse Th1/Th2/Th17 Panel (Antigenix America, каталожный номер MMX171, США) с использованием шариков, сенсибилизированных моноклональными антителами к цитокинам: IFNγ (интерферон гамма), IL-1β, IL-5, IL-6, IL-10, IL-17, TNFα (фактор некроза опухоли альфа), IL-10. Уровень цитокинов определяли согласно инструкции производителя с использованием проточного цитометра FC-500 (Beckman Coulter, США). Статистическую обработку материала проводили при помощи программного пакета WINMDI 2.8.
Результаты
При изучении спонтанной продукции отдельных цитокинов в супернатантах культур клеток, взятых из разных биолокусов, выявлены следующие особенности.
От мышей были получены кожные биоптаты, которые дезинтегрировали с получением отдельных клеток. Данные о цитокинах, продуцирумых клетками, изолированными из кожи, приведены в таблице 1. В процессе культивирования, МНЛ, выделенные из воспаленного очага, продуцировали повышенные уровни таких цитокинов, как IL- 1A (повышение в 3,1 раза), IL-17 (в 2,4 раза), IL-5 (в 2,1 раза), IFNγ (в 1,3 раза). Содержание IL- 6, TNFα и IL-10 было сопоставимо с контрольной группой. Так как продукция IL-10 достоверно не повышалась, баланс провоспалительных/противовоспалительных цитокинов был сдвинут в сторону преобладания воспалительных процессов. В связи с этим местное воспаление кожных покровов перерастало в системное.
ТАБЛИЦА 1. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СПОНТАННОЙ ПРОДУКЦИИ ЦИТОКИНОВ В СУПЕРНАТАНТАХ КУЛЬТУР КЛЕТОК, ИЗОЛИРОВАННЫХ ИЗ КОЖИ МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6 (М±σ), пкг/мл
TABLE 1. DETERMINATION OF SPONTANEOUS CYTOKINE PRODUCTION IN CELL CULTURE SUPERNATANTS ISOLATED FROM THE SKIN OF C57BL/6 MICE (М±σ), pg/mL
Продукция цитокинов Cytokine production | IFNγ | IL-6 | IL-5 | IL-17A | IL-1A | TNFα | IL-10 |
Имиквимод IMQ | 261,6±9,0* | 46,5±4,6 | 121,5±64,5* | 286,9±8,5* | 195,6±8,8* | 182,8±10,5 | 19,0±2,7 |
Контроль Control | 204,8±16,3 | 49,0±4,1 | 59,9±6,6 | 116,6±9,7 | 62,8±6,2 | 172,4±7,9 | 15,2±4,8 |
Примечание. М – средняя арифметическая; σ – стандартное отклонение; * p < 0,05 – достоверность различий между группами мышей (Mann–Whitney U test).
Note. M, the arithmetic mean; σ, the standard deviation; * p < 0.05, the reliability of differences between groups of mice (Mann–Whitney U test).
Оценивая спонтанную продукцию цитокинов в супернатантах мононуклеаров периферической крови мышей (табл. 2), обращает на себя внимание, что у мышей с острым воспалением достоверно повышенными оказались почти все изучаемые цитокины (за исключением TNFα). Более всего была повышена продукция IL-1A (201,8±20,0 по сравнению с контролем 22,0±3,5) – в 9,1 раза; IL-6 (72,0±10,3 по сравнению с контролем 20,9±2,6) – повышение концентрации в 3,6 раза, IL-5 (164,8±13,1 по сравнению с контролем 51,6±6,6) – повышение в 3,2 раза, IL-17A (228,2±9,2 по сравнению с контролем 101,1±8,1) – выше в 2,3 раза по сравнению с контрольными мышами.
ТАБЛИЦА 2. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СПОНТАННОЙ ПРОДУКЦИИ ЦИТОКИНОВ В СУПЕРНАТАНТАХ МОНОНУКЛЕАРНЫХ КЛЕТОК, ИЗОЛИРОВАННЫХ ИЗ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6 (М±σ), пкг/мл
TABLE 2. DETERMINATION OF SPONTANEOUS CYTOKINE PRODUCTION IN THE SUPERNATANTS OF MONONUCLEAR CELLS ISOLATED FROM THE PERIPHERAL BLOOD OF C57BL/6 MICE (М±σ), pg/mL
Продукция цитокинов Cytokine production | IFNγ | IL-6 | IL-5 | IL-17A | IL-1A | TNFα | IL-10 |
Имиквимод IMQ | 261,3±12,7* | 72,2±10,3* | 164,8±13,1* | 228,2±9,2* | 201,8±20,0* | 195,2±15,6 | 26,8±4,4* |
Контроль Control | 172,7±7,2 | 20,8±2,9 | 51,6±6,6 | 101,1±8,1 | 22,0±3,5# | 181,1±8,3 | 17,7±4,1 |
Примечание. См. примечание к таблице 1.
Note. As for Table 1.
Спонтанная продукция цитокинов в супернатантах клеток, выделенных из лимфоузлов мышей (табл. 3), характеризуется несколько меньшей интенсивностью по сравнению с клетками крови. Однако и в этом исследуемом биоматериале были выявлены достоверные изменения. Максимально повышенным – в 1,9 раза, оказался синтез IL-1A (152,6±9,6 против 79,1±5,8), затем IFNγ в 1,6 раза (268,0±10,7 против 167,0±4,5). Уровень IL-6, IL-5 и IL-17 был выше по сравнению с интактными мышами в 1,3-1,2 раза. Продукция TNFα и IL-10 была сопоставима со значениями контрольной группы.
ТАБЛИЦА 3. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СПОНТАННОЙ ПРОДУКЦИИ ЦИТОКИНОВ В СУПЕРНАТАНТАХ КЛЕТОК, ИЗОЛИРОВАННЫХ ИЗ ЛИМФАТИЧЕСКИХ УЗЛОВ МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6 (М±σ), пкг/мл
Table 3. Determination of spontaneous cytokine production in cell supernatants isolated from lymph nodes of C57BL/6 mice (М±σ), pg/mL
Продукция цитокинов Cytokine production | IFNγ | IL-6 | IL-5 | IL-17A | IL-1A | TNFα | IL-10 |
Имиквимод IMQ | 268,0±10,7* | 83,1±8,4 | 146,5±8,9* | 171,7±10,9* | 152,6±9,6* | 183,7±12,1 | 24,5±4,5 |
Контроль Control | 226,6±6,1 | 81,6±5,3 | 147,1±6,1 | 137,3±5,9 | 13,2±3,5 | 188,2±12,1 | 24,0±4,1 |
Примечание. См. примечание к таблице 1.
Note. As for Table 1.
Спонтанная продукция цитокинов в супернатантах спленоцитов носит разнонаправленный характер (табл. 4). Уровень двух цитокинов – IL-1A (214,8±10,6 против 13,2±3,5) и IL-17A (209,9±11,5 против 137,9±5,9) был повышен по сравнению с контрольной группой в 16,1 и 1,5 раза. В то же время продукция IL-6 (76,8±4,7 против 108,4±10,6) и IFNγ (257,4±9,7 против 356,6±6,9) была ниже, чем в супернатантах МНЛ селезенок контрольных мышей. Значения концентраций IL-5, TNFα и IL-10 были сопоставимы с контрольной группой.
ТАБЛИЦА 4. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СПОНТАННОЙ ПРОДУКЦИИ ЦИТОКИНОВ В СУПЕРНАТАНТАХ КУЛЬТУР КЛЕТОК, ИЗОЛИРОВАННЫХ ИЗ СЕЛЕЗЕНКИ МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6 (М±σ), пкг/мл
TABLE 4. DETERMINATION OF SPONTANEOUS CYTOKINE PRODUCTION IN CELL CULTURE SUPERNATANTS ISOLATED FROM THE SPLEEN OF C57BL/6 MICE (М±σ), pg/mL
Продукция цитокинов в супернатантах клеток селезенки Cytokine production in the supernatants of spleen cells | IFNγ | IL-6 | IL-5 | IL-17A | IL-1A | TNFα | IL-10 |
Имиквимод IMQ | 257,4±9,7* | 76,8±4,7* | 169,2±7,5 | 209,9±11,5* | 214,8±10,6* | 195,9±11,9 | 22,9±3,5 |
Контроль Control | 356,6±6,9 | 108,4±10,6 | 163,6±7,5 | 137,9±5,9 | 13,2±3,5 | 188,2±12,1 | 24,02±4,1 |
Примечание. См. примечание к таблице 1.
Note. As for Table 1.
При анализе цитокинов, продуцируемых культурами клеток, выделенных из тимуса (табл. 5), в группе воспроизводимой модели воспаления по сравнению с контролем было выявлено угнетение продукции части цитокинов – IL-6 (99,0±28,0 против 460,3±52,6), IFNγ (267,0±47,0 против 517,1±70,4), IL-5 (157,0±12,0 против 291,9±28,9), IL-10 (24,0±5,0 против 39,7±5,1) в 4,6, 1,9, 1,9 и 1,6 раза соответственно. Однако уровень IL-1A (266,0±31,0 против 194,5±23,9) был выше в 1,4 раза по сравнению с контролем. Уровень продукции IL-10 был схожим в сравниваемых группах.
ТАБЛИЦА 5. ОПРЕДЕЛЕНИЕ СПОНТАННОЙ ПРОДУКЦИИ ЦИТОКИНОВ В СУПЕРНАТАНТАХ КУЛЬТУР КЛЕТОК, ИЗОЛИРОВАННЫХ ИЗ ТИМУСА МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6 (М±σ), пкг/мл
TABLE 5. DETERMINATION OF SPONTANEOUS CYTOKINE PRODUCTION IN CELL CULTURE SUPERNATANTS ISOLATED FROM THE THYMUS OF C57BL/6 MICE (М±σ), pg/mL
Продукция цитокинов Cytokine production | IFNγ | IL-6 | IL-5 | IL-17A | IL-1A | TNFα | IL-10 |
Имиквимод IMQ | 310,1±8,6* | 124,9±6,4* | 165,6±9,1* | 202,4±8,7* | 295,1±7,9* | 196,9±8,9* | 25,9±4,1 |
Контроль Control | 667,3±11,4 | 304,1±7,6 | 116,4±8,2 | 137,1±6,2 | 198,8±6,3 | 23,12±4,50 | 25,7±5,7 |
Примечание. См. примечание к таблице 1.
Note. As for Table 1.
Мониторинг концентрации цитокинов показал изменение уровня провоспалительных цитокинов (IL-1α, IL-6, IL-17, IFNγ), продукция противовоспалительного цитокина IL-10 была повышена только в супернатантах культуры МНЛ крови.
Обсуждение
Имиквимод, нанесенный на интактную кожу, путем связывния с TLR 7-го типа на дендритных клетках, в частности клетках Лангерганса, непосредственно вмешиваясь в процесс цитокиновой регуляции и запуская выраженную гиперпродукция целого ряда провоспалительных цитокинов, запускает патологический процесс [1, 10, 11]. Как видно из представленных данных, несмотря на то, что индуктор патологии – имиквимод поступал в организм мышей через кожу, его введение оказало системное воздействие – воспалительная реакция не ограничилась кожными покровами, а протекала в центральных и периферических иммунных органах.
Сравнивая спонтанную продукцию цитокинов в супенатантах клеток, выделенных из разных биолокусов, обращает на себя внимание, что максимально заметные изменения в интенсивности синтеза медиаторов иммунного ответа наблюдаются в крови мышей.
Наиболее выраженная реакция на поступление имиквимода в организм мышей наблюдался в отношении провоспалительного цитокина интерлейкина-1. Анализируя спонтанную продукция этого цитокина у интактных мышей, видно, что в отсутствие воздействия индуктора патологии (имиквимода) у мышей наблюдается некий базовый уровень синтеза IL-1 (13-22 пкг), при этом в коже и тимусе синтез данного цитокина протекает более интенсивно (62 и 198 пкг), что можно объяснить тем, что даже здоровая кожа испытывает значительное антигенное воздействие. У мышей опытной группы, обработанных имиквимодом, в культурах клеток из всех изучаемых биолокусов наблюдалось повышенное накопление IL-1 в супернатантах. В крови, лимфоузлах и селезенке оно было очень выраженным. Наибольший рост концентрации IL-1 (16-кратный) был выявлен в супернатантах селезенки, а в коже и тимусе он был менее интенсивным, что связано с изначально более высокими концентрациями этого цитокина у интактных мышей.
Интересными были полученные данные по содержанию IL-6. У интактных мышей спонтанная продукция данного провоспалительного цитокина в отсутствие стимуляции имиквимодом была довольно значительной в культуре МНЛ крови, тимуса (304 пкг), а в культурах МНЛ селезенки, кожи и лимфоузлов синтез протекал менее интенсивно (108, 49 пкг). А в процессе воспроизведения модели острого псориатического воспаления наблюдалось угнетение синтеза данного цитокина в культурах МНЛ крови, тимуса и селезенки в 2,4 и 1,4 раза, а в культурах МНЛ лимфоузлов и кожи продукция IL-6 не различалось у мышей контрольной и экспериментальной групп.
Спонтанная продукция IL-17 у мышей контрольной группы находилась приблизительно на одном уровне во всех исследуемых биолокусах и колебалась в пределах 101,0-137,0 пкг. По современным представлениям, IL-17A вызывает пролиферацию кератиноцитов и является одним из главных эффекторов при псориазе [3, 4]. При воздействии имиквимода на организм мышей наблюдалось усиление продукции данного провоспалительного цитокина в 1,2-2,4 раза, наиболее ощутимое в культуре МНЛ крови и кожи (в 2,2 и 2,4 раза).
Продукция TNFα в культуре МНЛ тимуса была незначительной и составляла 23 пкг, в то время как в культивируемых МНЛ из остальных биолокусов продукция была более интенсивной и варьировала в пределах от 172 пкг до 188 пкг. Имиквимод оказал свое воздействие на интенсивность продукции фактора некроза опухоли α только в культуре МНЛ тимуса, где наблюдалось усиление продукции в 8,5 раза, а в остальных исследуемых биолокусах не наблюдалось изменения продукции данного цитокина.
Культура МНЛ крови и кожи интактных мышей продуцировала в культуральную жидкость незначительные количества IL-5 (51 и 59 пкг), уровень продукции в культурах клеток из других биолокусов был более высоким в диапазоне от 116 пкг до 169 пкг. Под влиянием имиквимода синтез IL-5 усиливался в 1,4-3,2 раза в культурах МНЛ тимуса, кожи и крови, а в культурах МНЛ лимфоузлов и селезенки изменений продукции не наблюдалось.
Спонтанная продукция регуляторного цитокина IFNγ была достаточно интенсивной у мышей контрольной группы, особенно высоким этот синтез был в культуре МНЛ тимуса. Влияние имиквимода на продукцию IFNγ было разнонаправленным – в культуральных жидкостях селезенки и тимуса наблюдалось подавление синтеза цитокина в 1,4-2,1 раза, а в супернатантах МНЛ крови, лимфоузлов и кожи была замечена незначительная активизация продукции в 1,2-1,5 раза.
Заключение
Проведенное исследование свидетельствует о том, что при воспроизведении первичного имиквимод-индуцированного воспаления кожи мышей линии C57BL/6, клетки, выделенные из крови и других лимфоидных органов в процессе культивирования, синтезируют повышенные количества цитокинов, обладающих провоспалительным потенциалом. в первую очередь, IL-1 и IL-17, а также IFNγ, IL-6, которые поддерживают псориазоподобное воспаление. При этом роста продукции противоспалительного цитокина – IL-10 не наблюдалось (кроме супернатантов МНЛ крови), что способствовало прогрессированию воспалительной реакции.
Об авторах
Екатерина Вячеславовна Сорокина
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»; Академия постдипломного образования ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства» России
Автор, ответственный за переписку.
Email: sorokina-cathrine@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1188-6578
SPIN-код: 1052-6474
д.м.н., профессор, заведующая лабораторией механизмов регуляции иммунитета ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»; профессор кафедры дерматовенерологии и косметологии Академии постдипломного образования ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства» России
Россия, Москва; МоскваЭ. А. Ахматова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: ela.150@yandex.ru
младший научный сотрудник лаборатории терапевтических вакцин
Россия, МоскваВ. Н. Столпникова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: stolpnikova@yandex.ru
к.б.н., ведущий научный сотрудник лаборатории механизмов регуляции иммунитета
Россия, МоскваЕ. О. Калиниченко
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: gladius.domini@gmail.com
к.м.н., научный сотрудник лаборатории механизмов регуляции иммунитета
Россия, МоскваИ. В. Бишева
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: ibisheva@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-8143-7356
SPIN-код: 9846-1006
научный сотрудник лаборатории механизмов регуляции иммунитета
Россия, МоскваС. А. Сходова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: skhodova2009@yandex.ru
к.б.н., ведущий научный сотрудник лаборатории механизмов регуляции иммунитета
Россия, МоскваСписок литературы
- Бозрова С.В., Левицкий В.А., Недоспасов С.А., Друцкая М.С. Имиквимод: биохимические механизмы иммуномодулирующей и провоспалительной активности // Биомедицинская химия, 2013. Т. 59, вып. 3. С. 249-266. [Bozrova S.V., Levitsky V.A., Nedospasov S.A., Drutskaya M.S. Imiquimod: The biochemical mechanisms of immunomodulatory and anti-inflammatory activity. Biomeditsinskaya khimiya = Biomedical Chemistry, 2013, Vol. 3, pp. 249-266. (In Russ.)]
- Жуков А.С., Лавров Н.В., Хайрутдинов В.Р., Самцов А.В. Модели псориаза на лабораторных животных: современное состояние проблемы // Иммунология, 2019. Т. 40, № 2. С. 64-69. [Zhukov A.S., Lavrov N.V., Khairutdinov V.R., Samtsov A.V. Models of psoriasis on laboratory animals: current status of the problem. Immunologiya = Immunologiya, 2019, Vol. 40, no. 2, pp. 64-69. (In Russ.)]
- Камилов Ф.Х., Муфазалова Н.А., Капулер О.М., Разумная Ф.Г., Муфазалова Л.Ф. Цитокиновый дисбаланс в иммунопатогенезе псориаза // Фундаментальные исследования, 2015. №1 (ч. 5). С. 1065-1071. [Kamilov F.Kh., Mufazalova N.A., Kapuler O.M., Razumnaya F.G., Mufazalova L.F. Cytokine imbalance in the immunopathogene-sis of psoriasis. Fundamentalnye issledovaniya = Fundamental Research, 2015, no. 1, pp. 1065-1071. (In Russ.)]
- Круглова Л.С., Моисеев С.В. Блокада интерлейкина-17 – новые горизонты эффективности и безопасности в лечении псориаза // Клиническая фармакология и терапия, 2017. № 26 (2). C. 5-12. [Kruglova L.S., Moiseev S.V. Inhibition of interkeukin-17 – new horizons of efficacy and safety in the treatment of psoriasis. Klinicheskaya farmakologiya i terapiya = Clinical Pharmacology and Therapy 2017, no. 26 (2), pp. 5-12. (In Russ.)]
- Меркушова Е.Д., Хасанова Е.М., Ганковская Л.В. Механизмы врожденногоиммунитета в патогенезе псориаза: подходы к таргетной терапии // Медицинская иммунология, 2020. Т.22, № 3. С. 449-458. [Merkushova E.D., Khasanova E.M., Gankovskaya L.V. Mechanisms of innate immunity in pathogenesis of psoriasis: approaches to targeted therapy. Meditsinskaya Immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2020, Vol. 22, no. 3, pp. 449-458. (In Russ.)] doi: 10.15789/1563-0625-MOI-1949.
- Патрушев А.В., Самцов А.В., Никитин В.Ю., Сухарев А.В., Иванов А.М., Гумилевская О.П., Сухина И.А. Влияние очагов хронической инфекции на иммунный статус больных псориазом // Вестник дерматологии и венерологии, 2019. Т. 95, № 3. C. 16-24. [Patrushev A.V., Sukharev A.V., Nikitin V.Yu., Ivanov A.M., Sukhina I.A., Gumilevskaya O.P.. Influence of focal infection on the cytokine profile in patients with chronic dermatosis. Vestnik dermatologii i venerologii = Bulletin of Dermatology and Venereology, 2019, Vol. 95, no. 3, pp. 16-24. (In Russ.)]
- Пинегин Б.В., Иванов О.Л., Пинегин В.Б. Роль клеток иммунной системы и цитокинов в развитии псориаза // Российский журнал кожных и венерических болезней, 2013. № 3. C. 19-25. [Pinegin B.V., Ivanov O.L., Pinegin V.B. The role of immune cells and cytokines in the development of psoriasis. Rossiyskiy zhurnal kozhnykh i venericheskikh bolezney = Russian Journal of Skin and Venereal Diseases, 2013, no. 3, pp. 19-25. (In Russ.)]
- Сенникова С.В., Топтыгина А.П., Семикина Е.Л., Закиров Р.Ш., Акулова С.С. Субпопуляционный состав мононуклеаров и цитокиновый профиль венозной и капиллярной крови больных псориазом и здоровых людей // Медицинская иммунология, 2021. Т. 23, № 6. С. 1333-1346. [Sennikova S.V., Toptygina A.P., Semikina E.L., Zakirov R.Sh., Akulova S.S. Mononuclear subsets and cytokine profile of venous and capillary blood in patients with psoriasis and healthy people. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2021, Vol. 23, no. 6, pp. 1333-1346. (In Russ.)] doi: 10.15789/1563-0625-MSA-2391.
- Симбирцев А.С., Тотолян А.А. Цитокины в лабораторной диагностике // Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение, 2015. № 2. С. 82-98. [Simbirtsev A.S., Totolyan A.A. Cytokines in laboratory diagnostics. Infektsionnye bolezni: novosti, mneniya, obuchenie = Infectious Diseases: News, Opinions, Training, 2015, no. 2, pp. 82-98. (In Russ.)]
- Смирнов В.С., Кудрявцева Т.А. Вартоцид (имихимод). СПб.: Гиппократ, 2017. 144 с. [Smirnov V.S., Kudryavtseva T.A. Vartocid (imiquimod)]. St. Petersburg: Hippocrates, 2017. 144 p.
- Bubna A.K. Imiquimod – its role in the treatment of cutaneous malignancies. Ind. J. Pharmacol., 2015, Vol. 47, no. 4, pp. 354-363.
- Conn M.P. Animal models for the study of human disease. London: Academic Press, 2017. 1200 p.
- Richters C.D., Hoekstra M.J., du Pont J.S., Kreis R.W., Kamperdijk EW. Isolation of human skin dendritic cells by in vitro migration. Methods Mol. Med., 2001, Vol. 64, pp. 145-153.
- Zhang S., Liu X., Mei L., Wang H. Epigallocatechin-3-gallate (EGCG) inhibits imiquimod-induced psoriasis-like inflammation of BALB/c mice. BMC Complement. Altern. Med., 2016, Vol. 16, no. 1, 334. doi: 10.1186/s12906-016-1325-4.
- van der Fits L., Mourits S., Voerman J.S.A., Kant M., Boon L., Laman J.D., Cornelissen F., Mus A.-M., Florencia E., Prens E.P., Lubberts E. Imiquimod-induced psoriasis-like skin inflammation in mice is mediated via the IL-23/IL-17 Axis. J. Immunol., 2009, Vol. 182, no. 9, pp. 5836-5845.