Особенности экспрессии CD57 цитотоксическими Т-лимфоцитами при саркоидозе

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

С применением многоцветной проточной цитометрии на основании CD45RA, CD62L, CD27 и CD28 у больных хроническим саркоидозом (n=46) и условно здоровых добровольцев (n=46) проведена оценка экспрессии CD57 основными популяциями цитотоксических Т-лимфоцитов периферической крови. Показано, что уровень CD57 был достоверно выше на «наивных» клетках, клетках центральной и эффекторной памяти, а также зрелых эффекторных лимфоцитах популяции TEMRA. Следует отметить, что увеличение CD57+ клеток было характерно как для «не зрелых», так и для «переходных» популяций – EM1, EM2, EM4, pE1 и pE2 – CD3+CD8+ лимфоцитов больных. Полученные результаты указывают на участие цитотоксических Т-лимфоцитов в патогенезе саркоидоза, а также позволяют использовать CD57+ клетки в качестве нового маркера для оценки эффективности лечения данного заболевания.

Об авторах

И. В. Кудрявцев

Институт экспериментальной медицины; Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова

Автор, ответственный за переписку.
Email: noemail@neicon.ru
Россия

Н. М. Лазарева

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова; Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов

Email: noemail@neicon.ru
Россия

О. П. Баранова

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова

Email: noemail@neicon.ru
Россия

М. К. Серебрякова

Институт экспериментальной медицины

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Т. П. Сесь

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова; Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов

Email: noemail@neicon.ru
Россия

М. М. Илькович

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова

Email: noemail@neicon.ru
Россия

А. А. Тотолян

Институт экспериментальной медицины; Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Список литературы

  1. Баранова О. П., Илькович М. М., Сперанская А. А. Трудности диагностики саркоидоза органов ды- хания. Практическая медицина 2011, 3(51), 58–62. [Baranova O. P., Ilkovich M. M., Speranskaya A. A. Diffi culties in the diagnosis of sarcoidosis of the respiratory organs. Practical medicine 2011, 3(51), 58–92].
  2. Georas S. N., Chapman T. J., Crouser E. D. Sarcoidosis and T-helper cells. Th1, Th17, or Th17.1? Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2016, 193, 11, 1198–200.
  3. Miedema J. R., Kaiser Y., Broos C. E., W? senbeek M. S., Grunewald J., Kool M. Th17-lineage cells in pulmonary sarcoidosis and Lofgren’s syndrome: Friend or foe? J Autoimmun. 2018, 87, 82–96.
  4. Morais A., Alves H., Lima B., Delgado L., Goncalves R., Tafulo S. HLA class I and II and TNF-alpha gene polymorphisms in sarcoidosis patients. Rev Port Pneumol. 2008, 14(6), 727–146.
  5. Petursdottir D., Haraldsdottir S. O., Bjarnadottir K., Jonsson T., Gislason T., Gudmundsson S., Gudbjornsson B. Sarcoid arthropathy and the association with the human leukocyte antigen. The Icelandic Sarcoidosis Study. Clin Exp Rheumatol. 2013, 31 (5), 711–716.
  6. Prasse A., Georges C. G., Biller H., Hamm H., Matthys H., Luttmann W., Virchow J. C. Jr. Th1 cytokine pattern in sarcoidosis is expressed by bronchoalveolar CD4+ and CD8+ T cells. Clin Exp Immunol. 2000, 122(2), 241–248.
  7. Cinetto F., Agostini C. Advances in understanding the immunopathology of sarcoidosis and implications on therapy. Expert Rev Clin Immunol. 2016, 12, 9, 973– 988.
  8. Planck A., Katchar K., Eklund A., Gripenb?ack S., Grunewald J. T-lymphocyte activity in HLA-DR17 positive patients with active and clinically recovered sarcoidosis. Sarcoidosis Vasculitis and Diff use Lung Diseases 2003, 20, 2, 110–117.
  9. Хайдуков С. В., Байдун Л. А., Зурочка А. В., Тотолян А. А. Стандартизованная технология «исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметров-анализаторов» (проект). Медицинская иммунология 2012, 14 (3), 255–268. [Khaydukov S., Baidun L., Zurochka A., Totolyan A. Methods. Medical Immunology (Russia) 2012, 14 (3), 255–268].
  10. Кудрявцев И. В., Борисов А. Г., Волков А. Е., Савченко А. А., Серебрякова М. К., Полевщиков А. В. Анализ уровня экспрессии CD56 и CD57 цитотоксическими Т-лимфоцитами различного уровня дифференцировки. Тихоокеанский медицинский журнал 2015, 2(60), 30–35. [Kudryavtsev I. V., Borisov A. G., Volkov A. E., Savchenko A. A., Serebryakova M. K., Polevschikov A. V. CD56 and CD57 expression by distinct populations of human cytotoxic T lymphocytes. Pacifi c Medical Journal 2015, 2 (60), 30–35.].
  11. Кудрявцев И. В., Борисов А. Г., Васильева Е. В., Кробинец И. И., Савченко А. А., Серебрякова М. К., Тотолян Арег А. Фенотипическая характеристика цитотоксических Т-лимфоцитов: регуляторные и эффекторные молекулы. Медицинская иммунология 2018, 20 (2), 227–240. [Kudryavtsev I. V., Borisov A. G., Vasilyeva E. V., Krobinets I. I., Savchenko A. A., Serebriakova M. K., Totolian Areg A. Phenotypic characterisation of peripheral blood cytotoxic T lymphocytes: regulatory and eff ector molecules. Medical Immunology (Russia) 2018, 20 (2), 227–240].
  12. Monteiro J., Batliwalla F., Ostrer H., Gregersen P. K. Shortened telomeres in clonally expanded CD28– CD8+ T cells imply a replicative history that is distinct from their CD28+CD8+ counterparts. J. Immunol. 1996, 156 (10), 3587–3590.
  13. Brenchley J. M., Karandikar N. J., Betts M. R., Ambrozak D. R., Hill B. J., Crotty L. E., Casazza J. P., Kuruppu J., Migueles S. A., Connors M., Roederer M., Douek D. C., Koup R. A. Expression of CD57 defi nes replicative senescence and antigen-induced apoptotic death of CD8+ T cells. Blood 2003, 101 (7), 2711–2720.
  14. Le Priol Y., Puthier D., Lecureuil C., Combadiere C., Debre P., Nguyen C., Combadiere B. High cytotoxic and specifi c migratory potencies of senescent CD8+ CD57+ cells in HIV-infected and uninfected individuals. J. Immunol. 2006, 177(8), 5145–5154.
  15. Inokuma M. S., Maino V. C., Bagwell C. B. Probability state modeling of memory CD8+ T-cell diff erentiation. J. Immunol. Methods 2013, 397(1–2), 8–17.
  16. Кудрявцев И. В. Т-клетки памяти: основные по- пуляции и стадии дифференцировки. Российский иммунологический журнал. 2014, 8, 4 (17), 947– 964. [Kudryavtsev I. V. Memory T cells: major populations and stages of diff erentiation. Russian Journal of Immunology. 2014, 8, 4 (17), 947–964].
  17. Parasa V. R., Forsslund H., Enger T., Lorenz D., Kullberg S., Eklund A., Skold M., Wahlstrom J., Grunewald J., Brighenti S. Enhanced CD8+ cytolytic T cell responses in the peripheral circulation of patients with sarcoidosis and non-Lofgren’s disease. Respir Med. 2018, 138, 38–44.
  18. Imberti L., Sottini A., Signorini S., Gorla R., Primi D. Oligoclonal CD4+ CD57+ T-cell expansions contribute

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Кудрявцев И.В., Лазарева Н.М., Баранова О.П., Серебрякова М.К., Сесь Т.П., Илькович М.М., Тотолян А.А., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № 77 - 11525 от 04.01.2002.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах