Distribution of the T cell element of the immune system in post-COVID patients with first identified hyperglycemia
- Authors: Savchuk K.S.1, Ryabova L.V.2
-
Affiliations:
- Saint Petersburg Pasteur Institute
- South Ural State Medical University
- Issue: Vol 27, No 2 (2024)
- Pages: 351-356
- Section: SHORT COMMUNICATIONS
- Submitted: 31.03.2024
- Accepted: 01.04.2024
- Published: 12.08.2024
- URL: https://rusimmun.ru/jour/article/view/16817
- DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-16817-DOT
- ID: 16817
Cite item
Full Text
Abstract
Post-COVID syndrome combines many adverse outcomes with often new-onset conditions, including type 2 diabetes mellitus (DM). The relevance of the study is the insufficient data on T cell immunity in patients with hyperglycemia after COVID-19. The purpose of this study was to identify the characteristics of T cell immunity in individuals with post-COVID syndrome and newly diagnosed carbohydrate metabolism disorders (CDM) in the post-COVID period. The study included 100 patients (32 men and 68 women) aged from 38 to 70 years (mean age (M±m) was 59.40±8.80 years) with a verified post-COVID-19 condition. All patients were divided into three groups: group 1 – patients with concomitant newly diagnosed impaired glucose tolerance (IGT) in the post-COVID period (prior to SARS-CoV-2 infection, no increase in glycemia was detected according to primary medical documentation) (n = 30), group 2 – patients with concomitant newly diagnosed type 2 diabetes mellitus (n = 30), and group 3 – patients with the development of post-COVID syndrome without hyperglycemia (n = 40). During the study, the following parameters were determined: CD45+, CD3+ (T lymphocytes), CD45+, CD3+, CD4+ (helper inducers), CD45+, CD3+, CD8+ (cytotoxic T lymphocytes), CD45+, CD3+, CD4+, CD25+, CD127- (T regulatory cells), CD45+, CD3+, CD4+, CD25+ (T lymphocytes – early activation), CD45+, CD3+, HLA-DR+ (T lymphocytes – late activation). Infection with SARS-CoV-2 with the subsequent development of post-COVID syndrome and persistent hyperglycemia (IGT, type 2 diabetes) in the post-COVID period was accompanied by a higher level of the total number of T lymphocytes. A study of the T lymphocyte population revealed changes in the subpopulation composition. In the group of patients with CDM, a significant increase in T cytotoxic and T regulatory cells was noted. More pronounced changes in the subpopulation composition were identified in the group of patients with newly diagnosed type 2 diabetes in the post-COVID period: an increase in the relative and absolute numbers of T helper cells and T cells of late activation of lymphocytes. Disorders of carbohydrate metabolism associated with COVID-19 are accompanied by changes in the subpopulation composition of T lymphocytes. In individuals with newly diagnosed type 2 diabetes in the post-COVID period, hyperactivation of the T cell component of the immune system was revealed. Heterogeneous data were obtained in individuals with newly diagnosed impaired glucose tolerance, which requires further study of this group of patients.
Full Text
Введение
Продолжающаяся пандемия новой коронавирусной инфекции (COVID-19) определяет актуальность анализа отдаленных последствий инфицирования SARS-CoV-2. Постковидный синдром объединяет множество неблагоприятных исходов с часто возникающими впервые состояниями, включая сердечно-сосудистые, тромботические и цереброваскулярные заболевания, сахарный диабет (СД) 2-го типа [3, 5, 4]. Li J. и cоавт. продемонстрировали, что увеличение численности субпопуляции циркулирующих моноцитов и Т-лимфоцитов предсказывает повышенную восприимчивость к СД 2 типа [7]. Исследования, изучающие иммунную дисрегуляцию у людей с длительным течением COVID, обнаружили изменения Т-клеток, включая истощение Т-клеток, снижение числа CD4+ и CD8+ эффекторных клеток памяти [6]. М. Добрынина и соавт. в исследованиях на больных с постковидным синдромом показали более высокий относительный уровень Т-лимфоцитов и Т-хелперов при резком снижении количества NK-клеток [1]. В группе больных с нарушениями углеводного обмена (НУО) при сниженном количестве NK-клеток также определены значимо более высокие уровни Т-хелперов [8]. Актуальностью исследования являются недостаточные данные о Т-клеточном иммунитете у больных с гипергликемией после перенесенного COVID-19.
Целью данного исследования явилось выявление особенностей Т-клеточного иммунитета у лиц с постковидным синдромом и впервые выявленными нарушениями углеводного обмена в постковидном периоде.
Материалы и методы
Настоящее исследование проводилось в периоды 2022-2023 гг. на базе ГАУЗ ОТКЗ ГКБ № 1 г. Челябинска, с одобрения Независимого локального этического комитета при ГАУЗ ОТКЗ «Городская клиническая больница № 1» г. Челябинска (протокол № 8 от 11.04.2022 года). Дизайн исследования – одномоментное поперечное. В исследование было включено 100 пациентов (32 мужчин и 68 женщин) в возрасте от 38 до 70 лет (средний возраст (M±m) составил 59,40±8,80 года) с верифицированным состоянием после COVID-19. Диагноз «постковидный синдром» установлен на основании данных о SARS-CoV-2 инфекции, полученных методом полимеразной цепной реакции, наличия IgA, M, G к вирусу SARS-CoV-2 инфекции, данных компьютерной томографии о перенесенной пневмонии. Исследование проводилось не менее чем через 6 месяцев после перенесенной пневмонии, вызванной SARS-CoV-2 инфекцией. Критерии включения в исследование: наличие инфицирования SARS-CoV-2 в анамнезе с развитием постковидного синдрома и подписанное информированное добровольное согласие. Критерии исключения: острые нарушения мозгового и коронарного кровообращения в анамнезе, лимфопролиферативные заболевания, злокачественные новообразования. Все пациенты были распределены на три группы: группа 1 – пациенты, инфицированные SARS-CoV-2 в анамнезе с развитием постковидного синдрома и сопутствующей впервые выявленной нарушенной толерантностью к глюкозе в постковидном периоде (до инфицирования SARS-CoV-2 повышения гликемии по данным первичной медицинской документации не было выявлено) (n = 30), группа 2 – пациенты, инфицированные SARS-CoV-2 в анамнезе с развитием постковидного синдрома и сопутствующим впервые выявленным СД 2-го типа (n = 30), группа 3 – пациенты, инфицированные SARS-CoV-2 в анамнезе с развитием постковидного синдромом без гипергликемии (n = 40). Оценка иммунного статуса осуществлялась методом проточной цитометрии на цитофлюориметре Navios (Beckman Coulter, США) по стандартизованной технологии оценки лимфоцитарного звена иммунитета [2]. В ходе исследования были определены следующие параметры: CD45+, CD3+ (Т-лимфоциты), CD45+, CD3+, CD4+ (хелперы индукторы), CD45+, CD3+, CD8+ (цитотоксические Т-лимфоциты), CD45+, CD3+, CD4+, CD25+, CD127- (Т-регуляторные клетки), CD45+, CD3+, CD4+, CD25+ (Т-лимфоциты – ранняя активация), CD45+, CD3+, HLA-DR+ (Т-лимфоциты – поздняя активация). Результаты обрабатывали с помощью пакета программ IBM SPSS Statistics, version 19.0. Описание выборок представлено в формате «M±m», где M – среднее арифметическое, m – ошибка среднего арифметического. Проверку статистических гипотез в группах проводили с использованием критериев Манна–Уитни. Отличия считали статистически значимыми при p < 0,05.
Результаты и обсуждение
Показатели Т-клеточного звена иммунитета в зависимости от вида нарушений углеводного обмена в постковидном периоде представлены в таблице 1.
Таблица 1. Сравнение показателей Т-клеточного звена иммунной системы у лиц с постковидным синдромом в зависимости от нарушений углеводного обмена
Table 1. Comparison of indicators of the t cell component of the immune system in individuals with post-Covid syndrome depending on carbohydrate metabolism disorders
Показатели иммунной системы Indicators of immune system | Группа 1 с НТГ в постковидном периоде Group 1 with IGT in the post-Covid period (n = 30) Р1 | Группа 2 с СД 2-го типа в постковидном периоде Group 2 with type 2 diabetes in the post-Covid period (n = 30) Р2 | Группа 3 без НУО в постковидном периоде Group 3 without NDO in the post-Covid period (n = 40) Р3 | р – уровень значимости p, significance level |
Общее число T-лимфоцитов (CD45+CD3+CD19-), отн. (%) Total number of T lymphocytes (CD45+CD3+CD19-) rel., % | 70,72±1,66 | 75,99±0,70 | 67,37±0,84 | p1, 2 = 0,042* p1, 3 = 0,041* p2, 3 = 0,000* |
Общее число T-лимфоцитов (CD46+CD3+CD19-), абс. (106 кл/л) Total number of T lymphocytes (CD45+CD3+CD19-) abs., 106 cells/L | 1470,73±59,78 | 1761,20±105,62 | 1264,38±54,38 | p1, 2 = 0,033* p1, 3 = 0,025* p2, 3 = 0,001* |
T-хелперы (CD45+CD3+CD4+), отн. (%) T helpers (CD45+CD3+CD4+) rel., % | 49,01±1,45 | 55,11±1,06 | 48,40±0,93 | p1, 2 = 0,039* p1, 3 = 0,652 p2, 3 = 0,000* |
T-хелперы (CD45+CD3+CD4+), абс. (106 кл/л) T helpers (CD45+CD3+CD4+) abs., 106 cells/L | 982,60±45,83 | 1243,21±92,29 | 940,90±43,37 | p1, 2 = 0,008* p1, 3 = 0,419 p2, 3 = 0,004* |
T-цитотоксические (CD45+CD3+CD8+), отн. (%) T cytotoxic (CD45+CD3+CD8+), rel. (%) | 22,90±0,98 | 24,75±1,65 | 19,51±0,67 | p1, 2 = 0,451 p1, 3 = 0,011* p2, 3 = 0,014* |
T-цитотоксические (CD45+CD3+CD8+), абс. (106 кл/л) T cytotoxic (CD45+CD3+CD8+), abs., 106 cells/L | 491,46±18,33 | 521,21±40,50 | 403,16±20,89 | p1, 2 = 0,446 p1, 3 = 0,027* p2, 3 = 0,049* |
t-лимфоциты (CD45+CD3+CD4+CD25+) ранняя активация, отн. % T lymphocytes (CD45+CD3+CD4+CD25+) early activation, rel. % | 6,22±0,50 | 6,56±0,53 | 5,39±0,38 | p1, 2 = 0,974 p1, 3 = 0,307 p2, 3 = 0,115 |
T-лимфоциты (CD45+CD3+CD4+CD25+) ранняя активация, абс. (106 кл/л) T lymphocytes (CD45+CD3+CD4+CD25+) early activation, abs. (106 cell/L) | 63,80±6,94 | 68,07±7,95 | 49,10±3,69 | p1, 2 = 0,953 p1, 3 = 0,183 p2, 3 = 0,106 |
T-лимфоциты (CD45+CD3+CD4+HLA DR+) поздняя активация, отн. % T lymphocytes (CD45+CD3+CD4+HLA DR+) late activation, rel. % | 3,65±0,34 | 4,96±0,50 | 3,59±0,34 | p1, 2 = 0,071 p1, 3 = 0,569 p2, 3 = 0,043* |
Таблица 1 (окончание)
Table 1 (continued)
T-лимфоциты (CD45+CD3+CD4+HLA DR+) поздняя активация, абс. (106 кл/л) T lymphocytes (CD45+CD3+CD4+HLA DR+) late activation, abs. (106 cell/L) | 36,73±3,85 | 48,20±5,37 | 34,35±3,88 | p1, 2 = 0,124 p1, 3 = 0,406 p2, 3 = 0,044* |
T-регуляторные лимфоциты (CD45+CD3+CD4+CD25+CD127- ), отн. % T regulatory lymphocytes (CD45+CD3+CD4+CD25+CD127- ) rel. % | 1,83±0,20 | 2,15±0,38 | 1,27±0,17 | p1, 2 = 0,790 p1, 3 = 0,025* p2, 3 = 0,016* |
T-регуляторные лимфоциты (CD45+CD3+CD4+CD25+CD127- ), абс. (106 кл/л) T regulatory lymphocytes (CD45+CD3+CD4+CD25+CD127- ) (106 cell/L) | 22,00±3,22 | 26,47±4,12 | 13,24±1,69 | p1, 2 = 0,944 p1, 3 = 0,040* p2, 3 = 0,013* |
Примечание. * – достоверность различий между группами, р < 0,05.
Note. *, significance of differences between groups; p < 0.05.
Современные данные показывают наличие устойчивого изменения лимфоцитов после перенесенного COVID-19 [9]. Согласно результатам нашего исследования, инфицирование SARS-CoV-2 с развитием в дальнейшем постковидного синдрома и стойкой гипергликемии (НТГ, СД 2 типа) в постковидном периоде сопровождалось более высоким уровнем общего числа Т-лимфоцитов. При исследовании популяции Т-лимфоцитов выявлены изменения субпопуляционного состава. В группе пациентов с НУО отмечено значимое повышение Т-цитотоксических, Т-регуляторных клеток. Более выраженные изменения субпопуляционного состава определены в группе больных с впервые выявленным СД 2-го типа в постковидном периоде – повышение относительного и абсолютного чисел Т-хелперов и Т-клеток поздней активации лимфоцитов. Данные изменения, вероятно, связаны с компенсаторным повышением Т-лимфоцитов и нарушением регуляции Т-клеточного звена иммунной системы у данной категории больных. Также обнаружение повышенного уровня Т-клеток в группе больных с НУО позволяет предположить наличие продолжающейся хронической стимуляции иммунной системы.
Выводы
- Нарушения углеводного обмена, ассоциированные с COVID-19, сопровождаются изменением субпопуляционного состава Т-лимфоцитов.
- У лиц с впервые выявленным СД 2 типа в постковидном периоде выявлена гиперактивация Т-клеточного звена иммунной системы.
- Неоднородные данные получены у лиц с впервые выявленной нарушенной толерантностью к глюкозе, что требует дальнейшего исследования указанной группы больных.
About the authors
K. S. Savchuk
Saint Petersburg Pasteur Institute
Author for correspondence.
Email: ksenyasavchuk@gmail.com
Expert Doctor of the Limited Liability Company AlfaStrakhovanie-OMS (Chelyabinsk); Dissertation Candidate
Russian Federation, Saint PetersburgL. V. Ryabova
South Ural State Medical University
Email: ksenyasavchuk@gmail.com
PhD, MD (Medicine), Professor, Department of Life Safety, Disaster Medicine and Emergency Medicine
Russian Federation, ChelyabinskReferences
- Добрынина М.А., Зурочка А.В., Комелькова М.В., Зурочка В.А., Праскурничий Е.А., Рябова Л.В., Сарапульцев А.П. Изменения врожденных факторов иммунной системы по данным изучения иммунной системы периферической крови у постковидных пациентов // Инфекция и иммунитет, 2023. Т. 13, № 5. C. 864-872. [Dobrynina M.A., Zurochka A.V., Komelkova M.V., Zurochka V.A., Praskurnichiy E.A., Ryabova L.V., Sarapultsev A.P. Alteration in innate immune cues assessed by analyzing peripheral blood immune system in post-COVID patients. Infektsiya i immunitet = Journal of Infection and Immunity, 2023, Vol. 13, no. 5, pp. 864-872. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-AII-9641.
- Зурочка А.В., Хайдуков С.В., Кудрявцев И.В., Черешнев В.А. Проточная цитометрия в биомедицинских исследованиях. Екатеринбург: РИО УрО РАН, 2018. 720 с. [Zurochka A.V., Khaidukov S.V., Kudryavtsev I.V., Chereshnev V.A. Flow cytometry in biomedical research]. Ekaterinburg: RIO Ural Branch of the Russian Academy of Sciences, 2018. 720 p.
- Сафронова Э.А., Рябова Л.В., Зурочка А.В. Клинико-иммунологическая характеристика пациентов с острым коронарным синдромом, перенесших Сovid-19. [Электронный ресурс] // Вестник уральской медицинской академической науки, 2023. Т. 20, № 1-2. С. 31-39. [Safronova E.A., Ryabova L.V., Zurochka A.V. Clinical and immunological characteristics of patients with acute coronary syndrome who underwent COVID-19. [Electronic resource]. Vestnik uralskoy meditsinskoy akademicheskoy nauki = Journal of Ural Medical Academic Science, 2023, Vol. 20, no. 1-2, pp. 31-39. doi: 10.22138/2500- 0918-2023-20-1-31-39.
- Birabaharan M., Kaelber D.C., Pettus J.H., Smith D.M. Risk of new-onset type 2 diabetes in 600 055 people after COVID-19: A cohort study. Diabetes Obes. Metab., 2022, Vol. 24, no. 6, pp. 1176-1179.
- Khunti K., Del Prato S., Mathieu C., Kahn S.E., Gabbay R.A., Buse J.B. COVID-19, hyperglycemia, and new-onset diabetes. Diabetes Care, 2021, Vol. 44, pp. 2645-2655.
- Klein J., Wood J., Jaycox J., Lu P., Dhodapkar R.M., Gehlhausen J.R., Tabachnikova A., Tabacof L., Malik A.A., Kamath K., Greene K., Monteiro V.S., Peña-Hernandez M., Mao T., Bhattacharjee B., Takahashi T., Lucas C., Silva J., Mccarthy D., Breyman E., Tosto-Mancuso J., Dai Y., Perotti E., Akduman K., Tzeng T.J., Xu L., Yildirim I., Krumholz H.M., Shon J., Medzhitov R., Omer S.B., van Dijk D., Ring A.M., Putrino D., Iwasaki A. Distinguishing features of Long COVID identified through immune profiling. medRxiv [Preprint], 2022. doi: 10.1101/2022.08.09.22278592.
- Li J., Niu Q., Wu A., Zhang Y., Hong L., Wang H. Causal relationship between circulating immune cells and the risk of type 2 diabetes: a Mendelian randomization study. Front. Endocrinol. (Lausanne), 2023, Vol. 14, 1210415. doi: 10.3389/fendo.2023.1210415
- Savchuk K.S. Characteristics of T-cell immunity and level of the natural killer cells content in COVID-19 convalescents with carbohydrate metabolism disorders. Medical Immunology (Russia), 2023, Vol. 25, no. 4, pp. 797-802. doi: 10.15789/1563-0625-COT-2848.
- Shuwa H.A., Shaw T.N., Knight S.B., Wemyss K., McClure F.A., Pearmain L., Prise I., Jagger C., Morgan D.J., Khan S., Brand O., Mann E.R., Ustianowski A., Bakerly N.D., Dark P., Brightling C.E., Brij S.; CIRCO; Felton T., Simpson A., Grainger J.R., Hussell T., Konkel J.E., Menon M. Alterations in T and B cell function persist in convalescent COVID-19 patients. Med, 2021, Vol. 2, no. 6, pp. 720-735.e4.